Оцінка впливу гіалуронової кислоти та ДМСО на перебіг низькотемпературного ушкодження тканин: експериментальна модель

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo35.04.210

Ключові слова:

гіалуронова кислота, кріозахисний розчин, низькотемпературне ушкодження тканин, шкіра, рани, кріопротектор, кріоконсервування

Анотація

У роботі проведено локальну гістологічну оцінку тканинної переносимості розчину, що містить гіалуронову кислоту, та досліджено його вплив на перебіг запального процесу після низькотемпературного ушкодження шкіри. На моделі низькотемпературного ушкодження тканини вивчено безпеку застосування 1%-го розчину високомолекулярної гіалуронової кислоти з додаванням 5 % диметилсульфоксиду (ДМСО) та його вплив на розвиток запального процесу за результатами клінічного спостереження, планіметричного та гістологічного досліджень. Додатково в порівняльному аспекті вивчено вплив 1%-их розчинів високомолекулярної (> 2000 кДа) та низькомолекулярної (10—100 кДа) гіалуронової кислоти на запальний процес після низькотемпературного ушкодження тканин. За результатами гістологічного дослідження не виявлено будь-яких морфологічних ознак токсичного або іншого негативного впливу підшкірного введення 1%-го розчину високомолекулярної гіалуронової кислоти з додаванням 5 % ДМСО на тканини. Порівняння впливу кріозахисних розчинів на перебіг ранового процесу після низькотемпературного ушкодження тканин виявило відмінності як за виразністю макроскопічних ознак запального процесу, так і за даними планіметричного дослідження. Включення гіалуронової кислоти до складу кріозахисного розчину розглядається як перспективний підхід до зниження концентрації ДМСО з метою створення розчинів, які можуть використовуватися без стадії відмивання.

Probl Cryobiol Cryomed. 2025; 35(4): 220—230

Біографії авторів

Tetiana Gurina, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Gennadiy Kovalov, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ експериментальної кріомедицини

Hanna Poliakova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Anatolii Seliuta, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ низькотемпературного консервування

Посилання

Antoszewska M, Sokolewicz EM, Barańska-Rybak W. Wide use of hyaluronic acid in the process of wound healing - a rapid review. Sci Pharm [Internet]. 2024 Apr 25 [cited 2025 Oct 29]; 92(2): 23. Available from: https://www.mdpi.com/2218-0532/92/2/23 CrossRef

Aryanfar E, Ghoncheh M, Afshar M, et al. Enhancing wound healing with synthetic hyaluronic acid injection in sutured incisions on BALB/c mice. Folia Med (Plovdiv) [Internet]. 2025 Feb 24 [cited 2025 Oct 13]; 67(1): e130272. Available from: https://foliamedica.bg/article/130272/ CrossRef

Asadpour R, Aminirad M, Rahbar M, et al. Effects of hyaluronic acid on sperm parameters, mitochondrial function and apoptosis of spermatozoa in Simmental bulls with good and poor freezing ability. J Anim Physiol Anim Nutr (Berl). 2024; 108(2): 383-94. CrossRef

Babenko NM, Litvinova OB, Pavlov S, et al. Problems of healing chronic wounds. Modern medical technology. 2023; 3: 66-70. CrossRef

Bennett B, Hanotaux J, Pasala AR, et al. Impact of lower concentrations of dimethyl sulfoxide on cryopreservation of autologous hematopoietic stem cells: a systematic review and meta-analysis of controlled clinical studies. Cytotherapy. 2024; 26(5): 482-9. CrossRef

Brunton LL, Knollmann BC, editors. Goodman & Gilman's The Pharmacological Basis of Therapeutics. New York: Mc Graw Hill; 2023. 1645 p.

Chistyakov DV, Astakhova AA, Azbukina NV, et al. High and low molecular weight hyaluronic acid differentially influences oxylipins synthesis in course of neuroinflammation. Int J Mol Sci [Internet]. 2019 Aug 9 [cited 2025 Oct 6]; 20(16): 3894. Available from: https://www.mdpi.com/1422-0067/20/16/3894 CrossRef

Chylińska N, Maciejczyk M. Hyaluronic acid and skin: its role in aging and wound-healing processes. Gels [Internet]. 2025 Apr 9 [cited 2025 Sep 4]; 11(4): 281. Available from: https://www.mdpi.com/2310-2861/11/4/281 CrossRef

Fraser JR, Laurent TC, Laurent UB. Hyaluronan: its nature, distribution, functions and turnover. J Intern Med. 1997; 42(1): 27-33. CrossRef

Galvez-Martin P, Soto-Fernandez C, Romero-Rueda J, et al. A novel hyaluronic acid matrix ingredient with regenerative, anti-aging and antioxidant capacity. Int J Mol Sci [Internet]. 2023 Mar 1 [cited 2025 Sep 4]; 24(5): 4774. Available from: https://www.mdpi.com/1422-0067/24/5/4774 CrossRef

Gurina TM, Nardid EO, Selyuta AA, et al. Sterilization and low temperature effects on regenerative potential of hyaluronic acid. Probl Cryobiol Criomed. 2025; 35(2): 68-75. CrossRef

Gurruchaga H, Saenz Del Burgo L, Orive G, et al. Low molecular-weight hyaluronan as a cryoprotectant for the storage of microencapsulated cells. Int J Pharm. 2018; 548(1): 206-16. CrossRef

Hu L, Nomura S, Sato Y, et al. Anti-inflammatory effects of differential molecular weight hyaluronic acids on UVB-induced calprotectin-mediated keratinocyte inflammation. J Dermatol Sci. 2022; 107(1): 24-31. CrossRef

Joshi K, Mazumder B, Chattopadhyay P, et al. Exploring the frostbite healing potential of hyaluronic acid based hydrogel of Manuka honey through in-silico antithrombotic and anti-platelet studies of major phytoconstituents and in vivo evaluation in Wistar rat model. Drug Dev Ind Pharm. 2021; 47(8): 1326-34. CrossRef

Kant V, Jangir BL, Kumar V. Gross and histopathological effects of dimethyl sulfoxide on wound healing in rats. Wound Medicine [Internet]. 2020 Jun 30 [cited 2025 Oct 29]; 30: 100194. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S2213909520300185 CrossRef

Ke C, Sun L, Qiao D, et al. Antioxidant acitivity of low molecular weight hyaluronic acid. Food Chem Toxicol. 2011; 49(10): 2670-5. CrossRef

Khaeruddin K, Wahjuningsih S, Ciptadi G, et al. Cryopreservation of Gaga' chicken semen from South Sulawesi, Indonesia with the addition of L-carnitine, hyaluronic acid, sucrose and their combination in diluent. Biodiversitas. 2022; 23(6): 3297-302. CrossRef

Khetan S, Corey O. Maintenance of stem cell viability and differentiation potential following cryopreservation within 3-dimensional hyaluronic acid hydrogels. Cryobiology. 2019; 90: 83-8. CrossRef

Klbik I, Čechová K, Maťko I, et al. On crystallization of water confined in liposomes and cryoprotective action of DMSO. RSC Adv. 2022; 12(4): 2300-9. CrossRef

Lee BM, Park SJ, Noh I, Kim CH. The effects of the molecular weights of hyaluronic acid on the immune responses. Biomater Res [Internet]. 2021 Aug 30 [cited 2025 Oct 6]; 25(1): 27. Available from: https://spj.science.org/doi/10.1186/s40824-021-00228-4 CrossRef

Lin M, Cao H, Li J. Control strategies of ice nucleation, growth, and recrystallization for cryopreservation. Acta Biomater. 2023; 155: 35-56. CrossRef

Liu X, Hu Y, Pan Y, et al. Exploring the application and mechanism of sodium hyaluronate in cryopreservation of red blood cells. Mater Today Bio [Internet]. 2021 Nov 10 [cited 2025 Oct. 29]; 12: 100156. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2590006421000648 CrossRef

Lotfi S, Mehri M, Sharafi M, Masoudi R. Hyaluronic acid improves frozen-thawed sperm quality and fertility potential in rooster. Anim Reprod Sci. 2017; 184: 204-10. CrossRef

Mero A, Campisi M. Hyaluronic acid bioconjugates for the delivery of bioactive molecules. Polymers. 2014; 6(2): 346-69. CrossRef

Miao T, Wang J, Zeng Y, et al. Polysaccharide-based controlled release systems for therapeutics delivery and tissue engineering: from bench to bedside. Adv Sci (Weinh) [Internet]. 2018 Jan 8 [cited 2025 Oct 6]; 5(4): 1700513. Available from: https://advanced.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/advs.201700513 CrossRef

Muramatsu H, Muramatsu T. Analysis of glycoprotein-bound carbohydrates from pluripotent embryonal carcinoma cells by pokeweed agglutinin-agarose. J Biochem. 1990; 107(4): 629-34. CrossRef

Partyka A, Łukaszewicz E, Niżański W. Effect of cryopreservation on sperm parameters, lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in fowl semen. Theriogenology. 2012; 77(8): 1497-504. CrossRef

Pilbauerova N, Schmidt J, Soukup T, et al. Innovative approach in the cryogenic freezing medium for mesenchymal stem cells. Biomolecules [Internet]. 2022 Apr 20 [cited 2025 Sep 23]; 12(5): 610. Available from: https://www.mdpi.com/2218-273X/12/5/610 CrossRef

Qian L, Yu S, Zhou Y. Protective effect of hyaluronic acid on cryopreserved boar sperm. Int J Biol Macromol. 2016; 87: 287-9. CrossRef

Rayahin JE, Buhrman JS, Zhang Y, et al. High and low molecular weight hyaluronic acid differentially influence macrophage activation. ACS Biomater Sci Eng. 2015; 1(7): 481-93. CrossRef

Rimac V, Bojanić I, Dabelić S, Ćepulić BG. The impact of cryoprotectant exposure time on post-thaw viability of autologous and allogeneic hematopoietic stem cells and leukocyte subpopulations. Acta Pharm. 2023; 73(4): 655-72. CrossRef

Silva APR, da Silva JC, Campos RMB, de Abreu AM. The use of Hyaluronic Acid for wound healing: integrative literature review. RSD [Internet]. 2022 Apr 17 [cited 2025 Oct. 29]; 11(5): e58711528581. Available from: https://rsdjournal.org/rsd/article/view/28581 CrossRef

Singh A, Li P, Beachley V, McDonnell P, Elisseeff JH. A hyaluronic acid-binding contact lens with enhanced water retention. Cont Lens Anterior Eye. 2015; 38(2): 79-84. CrossRef

Snetkov P, Zakharova K, Morozkina S, et al. Hyaluronic acid: the influence of molecular weight on structural, physical, physico-chemical, and degradable properties of biopolymer. Polymers (Basel) [Internet]. 2020 Aug 11 [cited 2025 Sep 24]; 12(8): 1800. Available from: https://www.mdpi.com/2073-4360/12/8/1800 CrossRef

Vareniuk IM, Dzerzhinsky ME. [Methods of cyto-histological diagnostics: a textbook]. Kyiv: Interservice; 2019: 256 p. Ukrainian.

Ujihira M, Iwama A, Aoki M, et al. Cryoprotective effect of low-molecular-weight hyaluronan on human dermal fibroblast monolayers. Cryo Letters. 2010; 31(2): 101-11. PubMed

Downloads

Опубліковано

2026-03-08

Як цитувати

Gurina, T., Kovalov, G., Poliakova, H., Naumova, O., Markovsky, V., & Seliuta, A. (2026). Оцінка впливу гіалуронової кислоти та ДМСО на перебіг низькотемпературного ушкодження тканин: експериментальна модель. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 35(4), 210—220. https://doi.org/10.15407/cryo35.04.210

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія