Методы хранения сложных РНК-содержащих вирусов

Авторы

  • Viktoriya V. Varianytsia ПАО «ФАРМСТАНДАРТ-БИОЛЕК», г. Харьков
  • Igor P. Vysekantsev Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo27.04.287

Ключевые слова:

сложноустроенные РНК–содержащие вирусы, долгосрочное хранение, лиофилизация, стабилизирующие вещества, защитные среды, сохранность вирус, вакцина

Аннотация

Ð’ обзоре раÑÑматриваетÑÑ Ð¾Ñ‚Ð´ÐµÐ»ÑŒÐ½Ð°Ñ Ð¿Ñ€Ð¾Ð±Ð»ÐµÐ¼Ð° криобиологии – разработка методов долгоÑрочного Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ ÑложноуÑтроенных РÐК-Ñодержащих вируÑов. ÐеобходимоÑÑ‚ÑŒ предÑтавленной работы обуÑловлена значительным раÑпроÑтранением инфекционных заболеваний, вызванных данными вируÑами, и увеличением количеÑтва иÑÑледований, направленных на разработку препаратов Ð´Ð»Ñ Ð¸Ñ… иммунопрофилактики и иммунотерапии. Ð’ технологии производÑтва Ñтих препаратов входÑÑ‚ Ñтапы долгоÑрочного Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð²Ð¸Ñ€ÑƒÑов. Ð”Ð»Ñ Ð¸Ñ… конÑÐµÑ€Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð¸Ñпользуют лиофилизацию и хранение при температурах ниже 0°С. Однако, в наÑтоÑщее Ð²Ñ€ÐµÐ¼Ñ Ð¾Ñ‚ÑутÑтвуют общепринÑтые подходы к выбору ÑоÑтава защитных Ñред Ð´Ð»Ñ Ð»Ð¸Ð¾Ñ„Ð¸Ð»Ð¸Ð·Ð°Ñ†Ð¸Ð¸ или низкотемпературного Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð²Ð¸Ñ€ÑƒÑов. С Ñтой целью применÑÑŽÑ‚ добавки и комбинации различных Ñахаров, многоатомных Ñпиртов, белков животного проиÑхождениÑ, химичеÑких Ñоединений. Ð”Ð»Ñ Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð»Ð¸Ð¾Ñ„Ð¸Ð»Ð¸Ð·Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ‹Ñ… вируÑов иÑпользуют температуры 4 или –20°С, а Ð´Ð»Ñ Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð²Ð¸Ñ€ÑƒÑов в замороженном ÑоÑтоÑнии –от –60 до –85°С, что обуÑловлено доÑтупноÑтью морозильных камер, обеÑпечивающих указанные температурные режимы, и выÑокой ÑохранноÑтью вируÑов разных ÑемейÑтв.

Биография автора

Igor P. Vysekantsev, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криомикробиологии

Библиографические ссылки

ATCC Virology guide. Tips and techniques for propagating virus in tissue culture and embryonated chicken eggs. Manassas: ATCC; 2016.

Bean B., Moore B.M., Sterner B. et al. Survival of influenza viruses on environmental surfaces. Journal of Infectious Diseases 1982; 146(1): 47–51. CrossRef PubMed

Brovarnik V.V., Golovach T.M. Information support of the microorganisms cultures depository. Control Systems and Machines 2015; (4): 58-66.

Burkova V.V., Visekantsev I.P., Lavrik A.A. Preservation of infectious activity of rabies virus industrial strains stored at various temperatures // Electronic periodical publication of SFU 'Live and bioconcent systems'. – 2014; (9). – Available from: http://www.jbks.ru/archive/issue -9/article – 2.

Carpenter J.F., Izutsu K., Randolph T.W. Freezing- and dryinginduced perturbations of protein structure and mechanisms of protein protection by stabilizing additives. In: L. Rey, J.C. May, editors. Freeze Drying/Lyophilisation of Pharmaceutical and Biological Products. 3d ed. London: Informa Healthcare; 2010: 167–197. PubMed

Chaniot S.C.M., Holmes M.J., Stott E.J., Tyrrell D.A.J. An investigation of media for the long term storage of three respiratory viruses. Arch Virol 1974; 44(4): 396–400. CrossRef

Fernie B.F., Gerin J.L. The stabilization and purification of respiratory syncytial virus using MgSO4. Virology 1980; 106(1): 141–144. CrossRef

Gould E.A. Methods for long-term virus preservation. Mol Biotechnol 1999; 13(1): 57–66. CrossRef

Greiff D. Stabilities of suspensions of influenza virus dried by sublimation of ice in vacuo to different contents of residual moisture and sealed under different gases. Appl Microbiol 1970; 20(6): 935–938. PubMed

Greiff D., Rightsel W. A. Stabilities of suspensions of viruses after freezing or drying by vacuum sublimation and storage. Cryobiology 1967; 3(6): 432–444. CrossRef

Gupta C.K., Leszczynski J., Gupta R.K., Siber G.R. Stabilization of respiratory syncytial virus (RSV) against thermal inactivation and freeze-thaw cycles for development and control of RSV vaccines and immune globulin. Vaccine 1996; 18(15): 1417–1420. CrossRef

Howell C.L., Miller M.J. Effect of sucrose phosphate and sorbitol on infectivity of enveloped viruses during storage. J Clin Microbiol 1983; 18(3): 658–662.

Hubalek Z. Protectants used in the cryopreservation of microorganisms. Cryobiology 2003; 46(3): 205–229. CrossRef

Johnson F.B. Transport of viral specimens. Clinical Microbiology Reviews 1990; 3(2): 120–131. CrossRef

Lvov D.K., Alimbarova L.M., Alkhovsky S.V. et al. Medical virology. Moscow: MIA; 2008.

Malenovska H. The influence of stabilizers and rates of freezing on preserving of structurally different animal viruses during lyophilization and subsequent storage. J Appl Microbiol 2014; 117(6): 1810–1819. CrossRef PubMed

McAleer W.J., Markus H.Z., McLean A. A. et al. Stability on storage at various temperatures of live measles, mumps and rubella virus vaccines in new stabilizer. Journal of Biological Standardization 1980: 8(4): 281–287. CrossRef

Meslin F.X., Kaplan M.M., Koprowski H. Laboratory techniques in rabies. Geneva: World Health Organization; 1996.

Pisal S., Wawde G., Salvankar S. et al. Vacuum foam drying for preservation of LaSota virus: effect of additives. AAPS PharmSciTech 2006; 7(3): E30–E37. CrossRef PubMed

Polupan I.M. Estimation of different storage methods of rabies virus vaccine strains. Veterinary Biotechnology 2011; (20): 127–133.

Rabies. In: OIE terrestrial manual. Paris: World Organisation for Animal Health; 2013. p. 1–28.

Sarkar J., Sreenivasa B.P., Singh R.P. et al. Comparative efficacy of various chemical stabilizers on the thermostability of a liveattenuated peste des petits ruminants (PPR) vaccine. Vaccine 2003; 21(32): 4728–4735. CrossRef

Stegniy M.Yu. Properties of cattle viruses, preserved at moderately low temperatures. Probl Cryobiol 2003; (3): 88–91.

Stroganova I.Ya. Infectious activity of cattle respiratory syncytial virus during storage. Bulletin of Krasnoyarsk State Agrarian University 2009; (12): 155–157.

Tanaka T., Takeda T., Miyajama R. Cryoprotective effect of saccharides on denaturation of catalase during freeze-drying. Chem Pharm Bull 1991; 675(5): 1091–1094. CrossRef

Tannock G.A., Hierholzer J.C., Bryce D.A. et al. Freeze-drying of respiratory syncytial viruses for transportation and storage. J Clin Microbiol 1987; 25(9): 1769–1771. PubMed

Tedeschi R., De Paoli P. Collection and preservation of frozen microorganisms. Methods Mol Biol 2011; 675: 313–326. CrossRef

PubMed

Wallis C., Melnick J.L. Stabilization of enveloped viruses by dimethyl sulfoxide. J Virol 1968; 2(9): 953–954. PubMed

World Health Organization. Recommendations for inactivated rabies vaccine for human use produced in cell substrates and embryonated eggs. In: WHO Expert Committee on Biological Standardization. Fifty-sixth report. Geneva: World Health Organization; 2007. p. 83–132.

Загрузки

Опубликован

2017-12-23

Как цитировать

Varianytsia, V. V., & Vysekantsev, I. P. (2017). Методы хранения сложных РНК-содержащих вирусов. Проблемы криобиологии и криомедицины, 27(4), 287–295. https://doi.org/10.15407/cryo27.04.287

Выпуск

Том 27 № 4 (2017): Проблемы криобиологии и криомедицины

Раздел

Обзорные статьи

Лицензия

Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:

  • Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).