Инфекционная активность лиофилизированного в различных защитных средах вакцинного штамма вируса бешенства L. Pasteur после его последующего хранения при разных температурах

Авторы

  • Viktoriia V. Varianytsia 1 Институт проблем криобиологии и криомедицины Нацинальной академии наук Украины, г. Харьков 2 ЧАО «Фармстандарт-Биолек», г. Харьков
  • Igor P. Vysekantsev Институт проблем криобиологии и криомедицины Нацинальной академии наук Украины, г. Харьков

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.04.333

Ключевые слова:

вирус бешенства, лиофилизация, культура клеток, защитные среды, долгосрочное хранение, сохранность вируса, инфекционная активность вируса

Аннотация

Ð’ работе иÑÑледовали ÑохранноÑÑ‚ÑŒ производÑтвенного вакцинного штамма вируÑа бешенÑтва L. Pasteur поÑле лиофилизации в различных защитных Ñредах и поÑледующего Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð¿Ñ€Ð¸ температурах 5, –20 и –80ºС. ПоÑле Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð² течение 24 меÑÑцев (Ñрок наблюдениÑ) наиболее выÑокие показатели инфекционной активноÑти вируÑа во вÑех Ñредах были отмечены при температуре –80ºС. МакÑимальную ÑохранноÑÑ‚ÑŒ вируÑа обеÑпечивала Ð·Ð°Ñ‰Ð¸Ñ‚Ð½Ð°Ñ Ñреда на оÑнове питательной Ñреды DMEM Ñ Ð´Ð¾Ð±Ð°Ð²Ð»ÐµÐ½Ð¸ÐµÐ¼ 0,5% бычьего Ñывороточного альбумина, 1% желатина и 5% Ñахарозы. Ð˜Ð½Ñ„ÐµÐºÑ†Ð¸Ð¾Ð½Ð½Ð°Ñ Ð°ÐºÑ‚Ð¸Ð²Ð½Ð¾ÑÑ‚ÑŒ образцов, лиофилизированных в Ñредах, Ñодержащих 5% Ñахарозы или 3% желатина и 5% Ñахарозы, или 10% Ñахарозы, была значимо ниже. УÑтановлено, что добавление 3% желатина в защитную Ñреду значительно увеличивает Ð²Ñ€ÐµÐ¼Ñ Ñ€Ð°ÑÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð¿Ñ€ÐµÐ¿Ð°Ñ€Ð°Ñ‚Ð¾Ð² по Ñравнению Ñ Ð´Ñ€ÑƒÐ³Ð¸Ð¼Ð¸ Ñредами и нормой регламента (не более минуты), что затруднÑет их практичеÑкое иÑпользование. Ð’Ñ€ÐµÐ¼Ñ Ñ€Ð°ÑÑ‚Ð²Ð¾Ñ€ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð¾Ð±Ñ€Ð°Ð·Ñ†Ð¾Ð² Ñ 1% желатина и 5% Ñахарозы или 10% Ñахарозы было значимо больше, чем препаратов Ñ 5% Ñахарозы, но ÑоответÑтвовало производÑтвенному регламенту.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(4): XXX–XXX

Биографии авторов

Viktoriia V. Varianytsia, 1 Институт проблем криобиологии и криомедицины Нацинальной академии наук Украины, г. Харьков 2 ЧАО «Фармстандарт-Биолек», г. Харьков

1 Отдел криомикробиологии

Igor P. Vysekantsev, Институт проблем криобиологии и криомедицины Нацинальной академии наук Украины, г. Харьков

Отдел криомикробиологии

Библиографические ссылки

ATCC. Virology guide. Tips and techniques for propagating virus in tissue culture and embryonated chicken eggs. [Internet]. Manassas: ATCC; 2016. 32 p. [Cited 25.09.18] Available from: https://www.atcc.org/~/media/PDFs/Culture%20Guides/Virology_Guide.ashx.

Burkova VV, Vysekantsev IP, Lavrik AA. [Preservation of infectious activity of rabies virus industrial strains stored at various temperatures]. Zhivye I Biokosnye Sist. [Internet]. 2014;(9):1–11. [Cited 19.09.18] Available from: http://www.jbks.ru/archive/issue-9/article-23. Russian.

Gould EA. Methods for long-term virus preservation. Molecular Biotechnology. 1999; 13(1):57–66.

CrossRef

Gruzdev LK, Ulasov VI, Gruzdev KN. [Estimation of the effectiveness of stabilizing media in the manufacture of a standard sample of the CVS strain of a ï¬xed rabies virus]. Vetpatologiya. 2007; (4):32–7. Russian.

Johnson FB. Transport of viral specimens. Clinical Microbiology Reviews. 1990; 3(2):120–31.

CrossRef

PubMed

Lalošević D, Lalošević V, Lazarević-Ivanc LJ, Knežević I. BHK-21 cell culture rabies vaccine: immunogenicity of a candidate vaccine for humans. Dev Biol. 2008; 131:421–9. PubMed

Lalosević D, Stankov S, Lazarević-Ivanc L, Lalosević V, Knezević I. Immunogenicity of BHK-rabies vaccine in human volunteers. Medicinski Pregled. 1998; 51:17–9. PubMed

Lvov DK, editor. [Medical virology]. Moscow: MIA; 2008. 656 p. Russian.

Malenovská H. The influence of stabilizers and rates of freezing рите лишние on preserving of structurally different animal viruses during Ñкобки. lyophilization and subsequent storage. Journal of Applied Microbiology. 2014; 117(6):1810–9. CrossRef PubMed

McAleer WJ, Markus HZ, McLean AA, et al. Stability on storage at various temperatures of live measles, mumps and rubella virus vaccines in new stabilizer. Journal of Biological Standardization. 1980; 8(4):281–7.

CrossRef PubMed

Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, editors. Laboratory techniques in rabies. 4th ed.. Geneva: WHO; 1996. 446 p.

Phillips GO, Harrop R, Wedlock DJ, et al. [A study of water binding in lyophilired viral vaccine systems]. Cryobiology. 1981;18(4):414–9.

CrossRef

Polupan IM. [Estimation of different storage methods of rabies virus vaccine strains]. Veterinarna BIotehnologIya. 2011; (20): 127–33. Ukrainian.

OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. [Internet]. Paris: World Organisation for Animal Health; 2018. Chapter 2.1.17, Rabies; p. 1–28. [Cited 25.09.18] Available from: http://www.oie.int/en/international-standard-setting/terrestrial-manual/access-online/

Rokickij PF. [Biological statistics]. Minsk: Vyisshaya shkola; 1973. 320 p. Russian.

Starodubova ES, Preobrazhenskaya OV, Kuzmenko YuV. [Vaccines against rabies: current status and development prospects]. Molekulyarnaya Biologiya. 2015; 49(4):577-84. Russian. CrossRef

Tanaka T, Takeda T, Miyajama R. Cryoprotective effect of saccharides on denaturation of catalase during freeze-drying. Chem Pharm Bull. 1991; 675(5):1091–4.

CrossRef

Varianytsia VV, Vysekantsev IP. Storage methods of complex RNA viruses. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27(4): 287–95.

CrossRef

WHO Expert Committee on Biological Standardization. Recommendations for inactivated rabies vaccine for human use produced in cell substrates and embryonated eggs. In: WHO Technical Report Series – 941. Fifty-sixth report. Geneva: WHO; 2007. p. 83–132.

Загрузки

Опубликован

2019-03-01

Как цитировать

Varianytsia, V. V., & Vysekantsev, I. P. (2019). Инфекционная активность лиофилизированного в различных защитных средах вакцинного штамма вируса бешенства L. Pasteur после его последующего хранения при разных температурах. Проблемы криобиологии и криомедицины, 28(4), 333–342. https://doi.org/10.15407/cryo28.04.333

Выпуск

Раздел

Криоконсервирование биологических систем