ВлиÑние процеÑÑа лиофилизации на ÑохранноÑÑ‚ÑŒ Ñтруктурно-функциональных характериÑтик лейкоконцентрата кордовой крови человека
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo29.04.332Ключевые слова:
лиофилизациÑ, лейкоконцентрат кордовой крови человека, колониеобразующие единицы, гемопоÑтичеÑкие Ñтволовые клетки, Т-регулÑторные клеткиАннотация
ИÑÑледовали влиÑние уÑловий лиофилизации на Ñтруктурно-функциональные характериÑтики лейкоконцентрата кордовой крови человека (ЛККЧ): количеÑтво и жизнеÑпоÑобноÑÑ‚ÑŒ, цитоморфологичеÑкие показатели, Ñодержание гемопоÑтичеÑких Ñтволовых (CD34+) и Т-регулÑторных клеток (CD4+CD25high), кроветворных колониеобразующих единиц в культуре (КОЕк). Ð”Ð»Ñ Ð»Ð¸Ð¾Ñ„Ð¸Ð»Ð¸Ð·Ð°Ñ†Ð¸Ð¸ клеток ЛККЧ иÑпользовали четыре режима, включающие две программы Ñ Ð¿Ñ€Ð¸Ð¼ÐµÐ½ÐµÐ½Ð¸ÐµÐ¼ 3,5% ДМСО и без него. Программы отличалиÑÑŒ значением температуры и длительноÑтью, при которых проводили первичное выÑушивание. При иÑпользовании первой программы клетки выÑушивали в течение 10 ч (–28ºС), второй программы – 9 ч (–18ºС). Разработанный метод лиофилизации ЛККЧ, который предполагал иÑпользование первой программы без ДМСО, обеÑпечил ÑохранноÑÑ‚ÑŒ клеток в гетерогенной популÑции кордовой крови по вÑем иÑÑледуемым характериÑтикам.
Â
Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(4): XXX–XXX
Библиографические ссылки
Akel S, Regan D, Wall D, et al. Current thawing and infusion practice of cryopreserved cord blood: the impact on graft quality, recipient safety, and transplantation outcomes. Transfusion. 2014; 54(11): 2997-3009. CrossRef
Ananyina AYe, Tsutsayeva AA, Balyberdina LM, et al. Lyophilisation of Streptomyces aureofaciens endospore culture. Problems of Cryobiology. 2008; 18(4): 404-6.
Castellano JM, Mosher KI, Abbey RJ, et al. Human umbilical cord plasma proteins revitalize hippocampal function in aged mice. Nature. 2017; 544 (7651): 488-92. CrossRef
Dufresne J, Hoang T, Ajambo J, et al. Freeze-dried plasma proteins are stable at room temperature for at least 1 year. Clin Proteomics [Internet]. 2017 [cited 27.10.2017]; 14: 35. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5659006/ CrossRef
Frimel G., editor. [Immunological methods]. Moskow: Meditsina; 1987. 472 p. Russian.
Goltsev AM, Sokol LV, Stetsyshyn VG, Mosiychuk VV, Bondarovich MO, Grisha IG, Ostankov MV, Lutsenko OD, Ostankova LV, Chernyshenko LH inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of lyophilization of leukoconcentrate of cord blood]. Ukraine patent N 125846, 2018 May 25. Ukranian.
Goltsev AM, Taranik GC, Grisha IG, Sokil LV, Bondarovich MO, Ostankov MV, Lutsenko OD, Goltsev KA, Ostankova LV, inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, assignee. [Method of lyophilization of leukoconcentrate of cord blood]. Ukrainian patent 113006, 2017 Jan 10. Ukranian.
Goltsev AN, Volina VV, Ostankov MV, et al. Effect of cryopreservation on functional properties of human cord blood leukoconcentrate nucleated cells. Problems of Cryobiology. 2010; 20(1): 66-72.
Ikeda K, Ohto H, Okuyama Y, et al. Adverse events associated with infusion of hematopoietic stem cell products: a prospective and multicenter surveillance study. Transfus Med Rev. 2018. 32(3): 186-94. CrossRef
International standards for cord blood collection, banking, and release for administration. 6th ed. Omaha (NE): NetCord-FACT; 2016.
Knapp HF, Hammond CA, Hui T, et al Single-cell analysis identifies a CD33+ subset of human cord blood cells with high regenerative potential. Nat Cell Biol. 2018; 20(6): 710-20. CrossRef
Lebedinets VV, Ostankova LV, Dubrava TG, et al. [Use of cryopreserved cord blood to correct immune system in a model of ischemic stroke]. Medytsyna Sogodni i Zavtra. 2015; (4): 2-9. Russian.
Lecchi L, Giovanelli S, Gagliardi B, et al. An update on methods for cryopreservation and thawing of hemopoietic stem cells. Transfus Apher Sci. 2016; 54 (3): 324-36. CrossRef
Li J, Hua TC, Gu XL, Ding Y, et al. Morphology study of lyophilisation mononuclear cells of human cord blood. CryoLetters. 2005; 26(3): 193-200. PubMed
Lo Presti V, Nierkens S, Boelens JJ, van Til NP. Use of cord blood derived T-cells in cancer immunotherapy: milestones achieved and future perspectives. Expert Rev Hematol. 2018; 11(3): 209-18. CrossRef
Makashova OE, Babijchuk LO, Zubova OL, Zubov PM. Optimization of cryopreservation technique for human cord blood nucleated cells using combination of cryoprotectant DMSO and antioxidant N-acetyl-L-cysteine. Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(4): 295-307. CrossRef
Maral S, Albayrak M, Pala C, et al. Dimethyl sulfoxide-induced tonic-clonic seizure and cardiac arrest during infusion of autologous peripheral blood stem cells. Cell Tissue Bank. 2018; 19(4): 831-2. CrossRef
Menshikov VV, editor. [Laboratory methods for research in clinics]. Moscow: Meditsina, 1987. p. 123-5. Russian.
Merkulov GA. [The course of histological-pathological technics]. Leningrad: Medgiz; 1961. 343 p. Russian.
Natan D, Nagler A, Arav A. Freeze-drying of mononuclear cells derived from umbilical cord blood followed by colony formation. Plos One [Internet]. 2009 [cited 21.04.209]; 4 (4): e5240. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0005240 CrossRef
Pushkar NS, Belous ÀÌ, Tsvetkov TsD [Theory and practice of cryogenic and sublimation preservation]. Kyiv: Naukova Dumka; 1984. 259 p. Russian.
Shereshkov S.I. [Culturing of hemopoietic cells on semisolid nutrient media]. Laboratornoe Delo. 1974; (3): 146-50. Russian.
Takanashi M, Selogie E, Reems JA, et al. Current practices for viability testing of cryopreserved cord blood products: an international survey by the cellular therapy team of the Biomedical Excellence for Safer Transfusion (BEST) Collaborative. Transfusion. 2018; 58(9): 2184-91. CrossRef
Tarannik AK, Ostankova LV, Grisha IG, et al. Frozen-dried human cord blood leukoconcentrate as correcting agent of immune status when treating atopic dermatitis (experimental study). Probl Cryobiol Cryomed. 2016; 26(2): 165. CrossRef
Varlamova TI, Kukunina TV, Zhmykhov AA. [Study of the influence of primary crystallization on formation of lyophilized product macrostructure during freezing of drug solutions]. Vestnik Sovremennykh Issledovaniy. 2017; 12(9): 6-11. Russian.
Wakayama S, Ito D, Kamada Y, et al. Tolerance of the freeze-dried mouse sperm nucleus to temperatures ranging from -196°C to 150°C. Sci Rep [Internet]. 2019 [cited 09.11.2019]; 9(1):5719. Available from: https://www.nature.com/articles/s41598-019-42062-8.pdf CrossRef
Xiao HH, Hua TC, Li J, et al. Freeze-drying of mononuclear cells and whole blood of human cord blood. CryoLetters. 2004; 25(2): 111-20. PubMed
ZacarÃas MF, Binetti A, Bockelmann W, et al. Safety, functional properties and technological performance in whey-based media of probiotic candidates from human breast milk. Int Microbiol. 2019; 22(2): 265-77. CrossRef
Загрузки
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:
- Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).
