ÐкÑÐ¿ÐµÑ€Ð¸Ð¼ÐµÐ½Ñ‚Ð°Ð»ÑŒÐ½Ð°Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½ÑÐ¿Ð»Ð°Ð½Ñ‚Ð°Ñ†Ð¸Ñ Ð¼Ð¸ÐºÑ€Ð¾Ñ„Ñ€Ð°Ð³Ð¼ÐµÐ½Ñ‚Ð¾Ð² поджелудочной железы неонатальных пороÑÑÑ‚ поÑле ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð¸Ð»Ð¸ гипотермичеÑкого Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð² раÑтворе ÐТК
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo25.01.045Ключевые слова:
Ñахарный диабет, Ð¿Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ»ÑƒÐ´Ð¾Ñ‡Ð½Ð°Ñ Ð¶ÐµÐ»ÐµÐ·Ð°, гипотермичеÑкое хранение, транÑплантациÑ, глюкозаАннотация
ÐŸÐ¾Ð´ÐºÐ¾Ð¶Ð½Ð°Ñ Ñ‚Ñ€Ð°Ð½ÑÐ¿Ð»Ð°Ð½Ñ‚Ð°Ñ†Ð¸Ñ Ð¼Ð¸ÐºÑ€Ð¾Ñ„Ñ€Ð°Ð³Ð¼ÐµÐ½Ñ‚Ð¾Ð² поджелудочной железы (мфПЖ) раÑÑматриваетÑÑ Ð² качеÑтве альтернативного подхода транÑплантации оÑтровков и иÑпользуетÑÑ Ð¿Ñ€Ð¸ невозможноÑти Ð¿Ð¾Ð»ÑƒÑ‡ÐµÐ½Ð¸Ñ Â«Ð¸Ñтинных» оÑтровков из фетальной ПЖ человека или ткани неонатальных животных (пороÑÑта, кролики). Ð’ работе иÑÑледовали уровень глюкозы у ÐºÑ€Ñ‹Ñ Ñ ÑкÑпериментальным Ñахарным диабетом (СД) I типа поÑле транÑплантации мфПЖ неонатальных пороÑÑÑ‚, а также Ñтруктурную ÑохранноÑÑ‚ÑŒ транÑплантата в завиÑимоÑти от его предварительной обработки путем ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð¸Ð»Ð¸ гипотермичеÑкого Ñ…Ñ€Ð°Ð½ÐµÐ½Ð¸Ñ (ГХ) в раÑтворе ÐТК («Custodiol®»). ПоÑле подкожной транÑплантации мфПЖ новорожденных пороÑÑÑ‚ крыÑам Ñ Ð¼Ð¾Ð´ÐµÐ»ÑŒÑŽ Ñтрептозотоцинового СД уровень глюкозы нормализовалÑÑ Ðº 45 Ñуткам. Ð’ результате транÑ-плантации мфПЖ, которые были подвергнуты гипотермичеÑкому хранению в раÑтворе ÐТК, наблюдалоÑÑŒ оÑлабление ги-пергликемии, Ñходное Ñ Ñ‚ÐµÐ¼, что и поÑле иÑÐ¿Ð¾Ð»ÑŒÐ·Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ñвежевыделенных мфПЖ. Путем гиÑтологичеÑкого и морфометри-чеÑкого анализа уÑтановлено, что к 15–22 Ñуткам в транÑплантате проиÑходит замещение Ñекреторной ткани ПЖ на Ñоединительную, причем Ñтот процеÑÑ Ð±Ð¾Ð»ÐµÐµ интенÑивный в культивированных мфПЖ. ПоÑкольку уровень глюкозы у ÐºÑ€Ñ‹Ñ Ñ Ð¼Ð¾Ð´ÐµÐ»ÑŒÑŽ СД нормализовалÑÑ Ð½Ð° фоне отÑутÑÑ‚Ð²Ð¸Ñ Ð¸Ð½Ñулинопродуцирующей ткани ПЖ в транÑплантате, предполагаетÑÑ ÑущеÑтвование ÑпецифичеÑких факторов, приводÑщих к ÑтимулÑции неогенеза b-клеток в ÑобÑтвенной железе реципиента.
Библиографические ссылки
Ackermann A.M., Gannon M. Molecular regulation of pancreatic b-cell mass development, maintenance, and expansion. Journ Mol Endocrinol 2007; 38(1–2): 193–206. CrossRef PubMed
Agarwal A., Brayman K.L. Update on islet cell transplantation for type 1 diabetes. Semin Intervent Radiol 2012; 29 (2): 90–98. CrossRef PubMed
Basta G., Racanicchi L., Mancuso F. et al. Transdifferentiation molecular pathways of neonatal pig pancreatic duct cells into endocrine cell phenotypes. Transplant Proc 2004; 36 (9): 2857–2863. CrossRef PubMed
Benhamou P.Y., Mullen Y. Immunomodulation of pancreatic islets by culture. In: Lanza R.P., Chick W.L., editors. Pancreatic islet transplantation, Boca Raton, FL: CRC Press; 1994; 2: 99–109.
Benikova E.A. Turchin I.S, Belyakova L.S. et al. Experience with the treatment of children with Diabetes mellitus using allo- and xenografts of cultures of pancreatic islet cells. Probl Endokrinol (Mosk) 1987; 33 (2): 19–22.
Blankensteijn J.D., Terpstra O.T. Liver preservation: the past and the future. Hepatology 1991; 13 (6): 1235–1250. CrossRef
Bonner-Weir S. Life and death of the pancreatic beta cells. Trends Endocrinol Metab 2000; 11 (9): 375–378. CrossRef
Cavallari A., Cillo U., Nardo B. et al. A multicenter pilot prospective study comparing Celsior and University of Wisconsin preserving solutions for use in liver transplantation. Liver Transpl 2003; 9 (8): 814–821. CrossRef PubMed
Danilova A.I., Zubkova S.T., Efimov A.S. et al. Effect of the transplantation of cultured pancreatic islet cell on the status of diabetic microangiopathy. Probl Endokrinol (Mosk) 1989; 35 (2): 9–14.
Fiorina P., Folli F., Bertuzzi F. et al. Long-term beneficial effect of islet transplantation on diabetic macro-/microangiopathy in type 1 diabetic kidney-transplanted patients. Diabetes Care 2003; 26 (4): 1129–1136. CrossRef PubMed
Gaba R.C., Garcia-Roca R., Oberholzer J.J. Pancreatic islet cell transplantation: an update for interventional radiologists. Vasc Interv Radiol 2012; 23 (5): 583–594. CrossRef PubMed
Girman P., Saudek F. The IKEM pancreas and islet transplant program as part of healthcare for type 1 diabetes patients: retrospective analysis of outcome from 1983 to 2010. Rev Diabet Stud 2011; 8(1): 35–43. CrossRef PubMed
Groth C.G., Korsgren O., Tibell A. et al. Transplantation of porcine fetal pancreas to diabetic patients. Lancet 1994; 344 (8934): 1402–1404. CrossRef
Gutierrez J., Guzman C., Correa G. et al. Liver transplantation in Medellin, Colombia: initial experience. Transplant Proc 2004; 36(6): 1677–1680. CrossRef PubMed
Hardikar A.A., Bhonde R.R. Modulating experimental diabetes by treatment with cytosolic extract from the regenerating pancreas. Diabetes Res Clin Pract 1999; 46(3): 203–211. CrossRef
Hsu B.R., Hsu S., Fu S.H. et al. Neonatal pig pancreatic cell cluster accelerates regeneration of mouse pancreatic beta cells. Transplant Proc 2003; 35(1): 492. CrossRef
Inada A., Nienaber C., Katsuta H. Carbonic anhydrase II-positive pancreatic cells are progenitors for both endocrine and exocrine pancreas after birth. Proc Natl Acad Sci USA 2008; 105(50): 19915–19919. CrossRef PubMed
Kin T. Islet isolation for clinical transplantation. Adv Exp Med Biol 2010; 654: 683–710. CrossRef PubMed
Korbutt G.S., Elliott J.F., Ao Ziliang et al. Large scale isolation, growth, and function of porcine neonatal islet cells. J Clin Invest 1996; 97(9): 2119–2129. CrossRef PubMed
Lang T.A., Secic M. How to Report Statistics in Medicine: Annotated Guidelines for Authors, Editors, and Reviewers. Moscow: Prakticheskaya Meditsina; 2011.
Lehach E.I., Bozhok G.A., Turchin I.S., Bondarenko T.P. Indices of sugar metabolism in rats with streptozotocin induced diabetes after combined xenotransplantation. Klinichna endokrinologiya ta endokrinna hirurgiya 2006; 16 (2): 64–68.
Limbert C., Path G., Jakob F., Seufert J. Beta-cell replacement and regeneration: Strategies of cell-based therapy for type 1 Diabetes mellitus. Diabetes Res Clin Pract 2008; 79(3): 389–399. CrossRef PubMed
Loganathan S., Radovits T., Hirschberg K. et al. Effects of Custodiol-N, a novel organ preservation solution, on ischemia/reperfusion injury. J Thorac Cardiovasc Surg 2010; 139(4): 1048–1056. CrossRef PubMed
Luca G., Nastruzzi C., Calvitti M. et al. Accelerated functional maturation of isolated neonatal porcine cell clusters: in vitro and in vivo results in NOD mice. Cell Transplant 2005; 4(5): 249–261. CrossRef
Maglione M., Oberhuber R., Cardini B. et al. Donor pretreatment with tetrahydrobiopterin saves pancreatic isografts from ischemia reperfusion injury in a mouse model. Am J Transplant 2010; 10(10): 2231–2240. CrossRef PubMed
Nikonenko A.S., Stupakov V.I., Sobokar V.A. Experience in the use of cardioplegic solution "Custodiol": Abstracts of III All-Russian Congress of Cardiovascular Surgeons. Grudnaya i serdechno-sosudistaya hirurgiya 1996; (6): 275–276.
Omer A., Duvivier-Kali V.F., Trivedi N. et al. Survival and maturation of microencapsulated porcine neonatal pancreatic cell clusters transplanted into immunocompetent diabetic mice. Diabetes 2003; 52(1): 69–75. CrossRef PubMed
Petrenko Y.A., Mazur S.P., Grischuk V.L. et al. The choice of induction factors for differentiation of multipotent mesenchymal stromal cells from human adipose tissue to insulin-producting cells in vitro. Kletochnaya Transplantologiya i Tkanevaya Inzheneriya 2011; 6 (1): 1–7.
Pobelensky O.N. Experimental model and its basis in the expediency for clinical application of cryopreserved cultures of the microfragments of islet cells at Diabetes mellitus. Meditsina Syogodni i Zavtra 2004; (2): 66–69.
Portha B., Kergoat M. Dynamics of glucose-induced insulin release during the spontaneous remission of streptozotocin diabetes induced in the newborn rat. Diabetes 1985; 34(6): 574–579. CrossRef
Rayat G.R., Rajotte R.V., Hering B.J. et al. In vitro and in vivo expression of Galalpha-(1,3)Gal on porcine islet cells is age dependent. J Endocrinol 2003; 177(1): 127–135. CrossRef PubMed
Ringe B., Braun F., Moritz M. et al. Safety and efficacy of living donor liver preservation with HTK solution. Transplant Proc 2005; 37(1): 316. CrossRef PubMed
Salehi P., Hansen M.A., Avila J.G. et al. Human islet isolation outcomes from pancreata preserved with histidine-tryptophan ketoglutarate versus University of Wisconsin solution. Trans-plantation 2006; 82(7): 983–985. CrossRef
Shapiro A.M., Lakey J.R., Ryan E.A. et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med 2000; 343(4): 230–238. CrossRef PubMed
Shumakov V.I., Bliumkin V.N., Ignatenko S.N. et al. Results of transplantation of pancreatic islet cell cultures to patients with Diabetes mellitus. Probl Endokrinol (Mosk) 1985; 31(5): 67–70.
Teppermen D., Teppermen H. Physiology of metabolism and the endocrine system. Moscow: Mir; 1989.
Thompson D.M., Begg I.S., Harris C. et al. Reduced progression of diabetic retinopathy after islet cell transplantation compared with intensive medical therapy. Transplantation 2008; 85(10): 1400–1405. CrossRef PubMed
Trahair J.F., Sangild P.T. Systemic and luminal influences on the perinatal development of the gut. Equine Vet J Suppl 1997; (24): 40–50. CrossRef
Trivedi N., Hollister-Lock J., Lopez-Avalos M. D. et al. Increase in b-cell mass in transplanted porcine neonatal pancreatic cell clusters is due to proliferation of b-cells and differentiation of duct cells. Endocrinology 2001; 142(5): 2115–2122. CrossRef
Weber D.J., McFarland R.D., Irony I. Selected Food and Drug Administration review issues for regulation of allogeneic islets of Langerhans as somatic cell therapy. Transplantation 2002; 74(12): 1816–1820. CrossRef PubMed
Weber D.J. FDA regulation of allogeneic islets as a biological product. Cell Biochem Biophys 2004; 40(3Suppl): 19–22. CrossRef
Weir G.C., Cavelti-Weder C., Bonner-Weir S. Stem cell approaches for diabetes: towards beta cell replacement. Genome Med 2011; 3(9): 61. CrossRef PubMed
Yamamoto T., Horiguchi A., Ito M. et al. Quality control for clinical islet transplantation: organ procurement and preservation, the islet processing facility, isolation, and potency tests. J Hepatobiliary Pancreat Surg 2009; 16(2): 131–136. CrossRef PubMed
Yamaoka T. Regeneration therapy of pancreatic beta cells: towards a cure for diabetes? Biochem Biophys Res Commun 2002; 296(5): 1039–4103. CrossRef
Загрузки
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2020 Yustiniya I. Kopich, Galina A. Bozhok, Evgeniy I. Legach
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:
- Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).
