Особливості культивування та контактної взаємодії in vitro кріоконсервованих мультипотентних стромальних клітин тимуса з гемопоетичними клітинами

Автор(и)

  • Kateryna I. Nikolska ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН України», м. Київ

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo28.01.005

Ключові слова:

кріоконсервування, мультипотентні стромальні клітини, тимус, клітини фетальної печінки, лімфоцити, культури клітин, контактна клітинна взаємодія

Анотація

Вивчено особливості поведінки у культурі in vitro кріоконсервованих і свіжовиділених мультипотентних стромальних клітин (МСК) тимуса мишей лінії СВА. Даний тип клітин має певний поверхневий імунофенотип та високу здатність до диференціювання за остео- та адипогенним напрямками у спеціальних середовищах. Після культивування у скляних
чашках Петрі, пластикових планшетах і на целофані свіжовиділені та кріоконсервовані клітини показували схожі властивості. При цьому свіжовиділені та кріоконсервовані МСК тимуса на скляній та пластиковій поверхнях формували фібробластні
колонії, а на целофані спостерігався їх зливний рост. Встановлено, що МСК тимуса мають мембранну спорідненість до тимоцитів, лімфоцитів лімфатичних вузлів і клітин фетальної печінки. Це обумовлює їх здатність до контактної взаємодії з різними гемопоетичними клітинами з формуванням асоціацій у вигляді фібробласто-лімфоцитарних розеток (ФЛР). Найбільш ефективна контактна взаємодія (утворення ФЛР) здійснюється за участю МСК і тимоцитів, хоча значну кількість ФЛР
утворюють також клітини лімфатичних вузлів і фетальної печінки мишей. Кріоконсервування МСК не впливає на їх здатність
до контактної взаємодії, що підтверджує можливість використання кріоконсервування для створення відповідних клітинних
трансплантатів.

Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(1): 005-013

Посилання

Anderson G., Anderson K.L., Tchilian E.Z. et al. Fibroblast dependency during early thymocyte development maps to the CD25+CD44+ stage and involves interactions with fibroblast matrix molecules. Eur J Immunol 1997; 27(5): 1200–1206. CrossRef PubMed

Anderson G., Moore N.C., Owen J.J., Jenkinson E.J. Cellular interactions in thymocyte development. Annu Rev Immunol 1996; 14: 73–99. CrossRef PubMed

Chertkov I.L., Gurevich O.A. Stem hematopoietic cell and its microenvironment. Moscow: Meditsyna; 1984.

Grischenko V.I., Petrenko A.Yu., Volkova N.A., Skorobogatova N.G. Colony-forming activity of fibroblast-like precursor cells from human embryonic liver under in vitro conditions. Dopov Nac Akad Nauk Ukr 2005; 2: 128–141.

Kassis I., Vaknin-Dembinsky A., Karussis D. Bone marrow mesenchymal stem cells: agents of immunomodulation and neuroprotection. Curr Stem Cell Res Ther 2011; 6(1): 63–68. CrossRef PubMed

Le Blanc K., Mougiakakos D. Multipotent mesenchymal stromal cells and the innate immune system. Nat Rev Immunol 2012; 12(5): 383–396. CrossRef PubMed

Mouiseddine M., Mathieu N., Stefani J. et al. Characterization and histological localization of multipotent mesenchymal stromal cells in the human postnatal thymus. Stem Cells Dev 2008; 17(6); 1165–1174. CrossRef PubMed

Musina R.A., Bekchanova E.S., Sukhikh G.T. Comparison of mesenchymal stem cells obtained from different human tissues. Bull Exp Biol Med 2005; 139(4): 504–509. CrossRef PubMed

Nikolskaya E. I., Butenko G. M. Structural-functional organization of the bone marrow hematopoietic stem cells niches. Cell and Organ Transplantology 2016; 4(1): 82–100. CrossRef

Osada M., Singh V.J., Wu K. et al. Label retention identifies a multipotent mesenchymal stem cell-like population in the postnatal thymus. PLoS One 2013; 8(12): e83024. CrossRef PubMed

Pol D. Culture of cells and tissues. Moscow: Meditsyna; 1963.

Prockop D.J., Phinney D.G., Bunnell B.A. Mesenchymal stem cells: methods and protocols. Totowa, NJ: Humana Press; 2008. CrossRef

Sawada M., Nagamine J., Takeda K. et al. Expression of VLA-4 on thymocytes. Maturation stage-associated transition and its correlation with their capacity to adhere to thymic stromal cells. J Immunol 1992; 149(11): 3517–3524. PubMed

Siepe M., Thomsen A.R., Duerkopp N. et al. Human neonatal thymus-derived mesenchymal stromal cells: characterization, differentiation, and immunomodulatory properties. Tissue Eng Part A 2009; 15(7): 1787–1796. CrossRef PubMed

Skorobogatova N.G., Volkova N.A., Petrenko A.Yu. Osteogenic and adipogenic capacity of fibroblast-like progenitor cells derived from human fetal liver. Tsitologiya 2008; 4: 317–322. CrossRef

Spaggiari G.M., L. Moretta. Cellular and molecular interactions of mesenchymal stem cells in innate immunity. Immunol Cell Biol 2013; 91(1): 27–31. CrossRef PubMed

Tarasov A.I., Petrenko A.Yu., Grischenko V.I., Jones D.R.E. Post-thaw viability of human fetal liver cells of different phenotype. Probl Cryobiol 2002; 3: 36–41. Full Text

Downloads

Опубліковано

2018-03-25

Як цитувати

Nikolska, K. I. (2018). Особливості культивування та контактної взаємодії in vitro кріоконсервованих мультипотентних стромальних клітин тимуса з гемопоетичними клітинами. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 28(1), 5–13. https://doi.org/10.15407/cryo28.01.005

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія