Виділення стовбурових клітин пульпи зубів мудрості людини та їхні властивості до і після кріоконсервування

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo31.01.058

Ключові слова:

пульпа, мультипотентні мезенхімальні стромальні клітини, імунофенотип, проліферація, мультилінійне диференціювання, кріоконсервування

Анотація

У роботі проводили виділення стовбурових клітин пульпи (СКП) зародків третіх молярів (зубів мудрості) людини ферментативним методом із використанням колагенази, досліджували їхню морфологію в умовах моношарового культивування, визначали імунофенотип, а також оцінювали проліферативні властивості та диференціювальний потенціал до та
після кріоконсервування. Показано, що за морфологічними ознаками, профілем поверхневих маркерів і диференціювальним потенціалом отримані СКП відповідають мультипотентним мезенхімальним стромальним клітинам. Кріоконсервування СКП
шляхом повільного охолодження (1 °С / хв) до ‒80°С із подальшим зануренням в рідкий азот у середовищі культивування
без кріопротектора призводить до загибелі клітин. Кріоконсервування за тією самою програмою в присутності 10% диметилсульфоксиду (ДМСО) і 20% сироватки дозволяє отримувати СКП із життєздатністю (82 ± 6)%, які виявляють метаболічну і проліферативну активність, а також здатність до спрямованого диференціювання в остео- та адипогенному напрямках на рівні,
притаманному клітинам до кріоконсервування.

Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(1): 058–069

Біографії авторів

Svitlana Mazur, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Olena Rogulska, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Olena Revenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Nataliya Volkova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Oleksandr Petrenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріобіохімії

Посилання

Alge DL, Zhou D, Adams LL, et al. Donor-matched comparison of dental pulp stem cells and bone marrow-derived mesenchymal stem cells in a rat model. J Tissue Eng Regen Med. 2010; 4(1): 73-81.CrossRef

Chen YK, Huang AH, Chan AW, et al. Human dental pulp stem cells derived from different cryopreservation methods of human dental pulp tissues of diseased teeth. J Oral Pathol Med. 2011; 40(10): 793-800. CrossRef

Couble ML, Farges JC, Bleicher F, et al. Odontoblast differentiation of human dental pulp cells in explant cultures. Calcif Tissue Int. 2000; 66(2): 129-38. CrossRef

Graziano A, d'Aquino R, Laino G, et al. Dental pulp stem cells: а promising tool for bone regeneration. Stem Cell Rev. 2008; 4(1): 21-6. CrossRef

Gronthos S, Mankani M, Brahim J, et al. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc Natl Acad Sci USA. 2000; 97(25): 13625-30. CrossRef

Hilkens P, Gervois P, Fanton Y, et al. Effect of isolation methodology on stem cell properties and multilineage differentiation potential of human dental pulp stem cells. Cell Tissue Res. 2013; 353(1): 65-78. CrossRef

Laino G, d'Aquino R, Graziano A, et al. A new population of human adult dental pulp stem cells: a useful source of living autologous fibrous bone tissue (LAB). J Bone Miner Res. 2005; 20(8): 1394-402. CrossRef

Li X, Bai J, Ji X, et al. Comprehensive characterization of four different populations of human mesenchymal stem cells as regards their immune properties, proliferation and differentiation. Int J Mol Med. 2014; 34(3): 695-704. CrossRef

Liu Y, Xu X, Ma X, et al. Cryopreservation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells with reduced dimethylsulfoxide and well-defined freezing solutions. Biotechnol Prog. 2010; 26(6): 1635-43. CrossRef

Nakamura H, Saruwatari L, Aita H, et al. Molecular and biomechanical characterization of mineralized tissue by dental pulp cells on titanium. J Dent Res. 2005; 84(6): 515-20. CrossRef

Perry BC, Zhou D, Wu X, et al. Collection, cryopreservation, and characterization of human dental pulp-derived mesenchymal stem cells for banking and clinical use. Tissue Eng Part C Methods. 2008; 14(2): 149-56. CrossRef

Peters H, Balling R. Teeth. Where and how to make them. Trends Genet. 1999; 15(2): 59-65.CrossRef

Petrenko YuA, Ivanov RV, Petrenko AYu, et al. Coupling of gelatin to inner surfaces of pore walls in spongy alginate-based scaffolds facilitates the adhesion, growth and differentiation of human bone marrow mesenchymal stromal cells. J Mater Sci Mater Med. 2011; 22(6): 1529-40. CrossRef

Petrenko YA, Rogulska OY, Mutsenko VV, et al. A sugar pretreatment as a new approach to the Me2SO- and xeno-free cryopreservation of human mesenchymal stromal cells. CryoLetters. 2014; 35 (3): 239-46. PubMed

Pisciotta A, Carnevale G, Meloni S, et al. Human dental pulp stem cells (hDPSCs): isolation, enrichment and comparative differentiation of two sub-populations. BMC Dev Biol [Internet]. 2015 Mar 14; [Cited 06.07.2018] 15:14 Available from: https://bmcdevbiol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12861-015-0065-x CrossRef

Potdar PD, Jethmalani YD. Human dental pulp stem cells: Applications in future regenerative medicine. World J Stem Cells. 2015; 7(5): 839-51. CrossRef

Rajendran R, Gopal S, Masood H, et al. Regenerative potential of dental pulp mesenchymal stem cells harvested from high caries patient's teeth. J Stem Cells. 2013; 8(1): 25-41.

Raoof M, Yaghoobi MM, Derakhshani A, et al. A modified efficient method for dental pulp stem cell isolation. Dent Res J (Isfahan). 2014; 11(2): 244-50. PubMed

Rogulska O, Petrenko Y, Petrenko A. DMSO-free cryopreservation of adipose-derived mesenchymal stromal cells: expansion medium affects post-thaw survival. Cytotechnology. 2017; 69(2): 265-76. CrossRef

Spath L, Rotilio V, Alessandrini M, et al. Explant-derived human dental pulp stem cells enhance differentiation and proliferation potentials. J Cell Mol Med. 2010; 14(6b):1635-44. CrossRef

Thesleff I, Aberg T. Molecular regulation of tooth development. Bone. 1999; 25(1): 123-5. CrossRef

Tirino V, Paino F, De Rosa A, et al. Identification, isolation, characterization, and banking of human dental pulp stem cells. Methods Mol Biol. 2012; 879: 443-63. CrossRef

Trufanova NA, Zaikov VS, Zinchenko AV, et al. Closed vitrification system as a platform for cryopreservation of tissue engineered constructs. CryoLetters. 2016; 37(6): 440-7. PubMed

Woods EJ, Perry BC, Hockema JJ, et al. Optimized cryopreservation method for human dental pulp derived stem cells and their tissues of origin for banking and clinical use. Cryobiology. 2009; 59(2): 150-7. CrossRef

Yalvac M, Ramazanoglu M, Rizvanov AA, et al. Isolation and characterization of stem cells derived from human third molar tooth germs of young adults: implications in neo-vascularization, osteo-, adipo- and neurogenesis. Pharmacogenomics J. 2010; 10(2): 105-13. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2021-03-30

Як цитувати

Mazur, S., Rogulska, O., Revenko, O., Volkova, N., & Petrenko, O. (2021). Виділення стовбурових клітин пульпи зубів мудрості людини та їхні властивості до і після кріоконсервування . Проблеми кріобіології і кріомедицини, 31(1), 58–69. https://doi.org/10.15407/cryo31.01.058

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем