Збереженість клітин інтерстицію сім’яника щурів після кріоконсервування у середовищах на основі гідроксиетил крохмалю
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo31.01.070Ключові слова:
кріоконсервування, кріопротектори, клітини Лейдига, гідроксиетил крохмальАнотація
Розробка кріозахисних середовищ, які не містять сироватку або інші ксеногенні компоненти, необхідна для безпечного використання кріоконсервованого матеріалу сім’яників із метою трансплантації. Було показано, що розчини, які
містили 10% фетальної телячої сироватки (ФТС) або 5 мг/мл бичачого сироваткового альбуміну (БСА), значно не збільшували
загальну збереженість клітин інтерстицію (КІ) після кріоконсервування, але підвищували метаболічну активність КІ та збереженість стероїд-продукуючих клітин (ГСД+-клітин). Застосування гідроксиетил крохмалю (ГЕК) у концентрації 50 та 100 мг/мл
у складі кріозахисних розчинів на основі ДМСО дозволило підвищити показники загальної збереженості КІ та збереженості ГСД+-клітин на відміну від середовищ, які містили БСА або ФТС. Кріозахисні середовища з ГЕК дозволяють знизити концентрацію диметилсульфоксиду (ДМСО) у розчині з 1,4 до 0,7 М та зберегти кількість і метаболічну активність КІ. Таким чином, розробка кріозахисних розчинів, які містять ДМСО у комбінації з ГЕК, може бути основою для створення розчинів, до яких не входять ксеногенні компоненти і, в свою чергу, може спростити процедуру впровадження кріоконсервованого матеріалу в практичну медицину.
Probl Cryobiol Cryomed 2021; 31(1): 070–081
Посилання
Ashwoodsmith M, Warby C, Connor K, Becker G. Low-temperature preservation of mammalian cells in tissue culture with polyvinylpyrrolidone (PVP), dextrans, and hydroxyethyl starch (HES). Cryobiology. 1972;9(5):441-9. CrossRef
Chen GR, Ge RS, Lin H, et al. Development of a cryopreservation protocol for Leydig cells. Hum Reprod. 2007;22(8):2160-8. CrossRef
Chen-Plotkin AS, Vossel KA, Samuels MA, Chen MH. Encephalopathy, stroke, and myocardial infarction with DMSO use in stem cell transplantation. Neurology. 2007;68(11):859-61. CrossRef
Connor W, Ashwood-Smith MJ. Cryoprotection of mammalian cells in tissue culture with polymers; possible mechanisms. Cryobiology. 1973;10(6):488-96. CrossRef
Dokras A, Sargent IL, Redman CW, Barlow DH. Sera from women with unexplained infertility inhibit both mouse and human embryo growth in vitro. Fertil Steril. 1993;60(2):285-92. CrossRef
Dyrlund TF, Kirkegaard K, Poulsen ET, et al. Unconditioned commercial embryo culture media contain a large variety of non-declared proteins: a comprehensive proteomics analysis. Hum Reprod. 2014;29(11):2421-30. CrossRef
Ferrucci PF, Martinoni A, Cocorocchio E, et al. Evaluation of acute toxicities associated with autologous peripheral blood progenitor cell reinfusion in patients undergoing high-dose chemotherapy. Bone Marrow Transplant. 2000;25(2):173-7. CrossRef
Gao X, Chang XB, Wu RY, Zhan BY. Allotransplantation of cryopreserved human Leydig cells. Transplant Proc. 1994;26(6):3490. PubMed
Gollub S, Schechter DC, Hirose T, Bailey CP. Use of hydroxyethyl starch solution in extensive surgical operations. Surg Gynecol Obstet. 1969;128(4):725-8. PubMed
Graham JE, Meola DM, Kini NR, Hoffman AM. Comparison of the effects of glycerol, dimethyl sulfoxide, and hydroxyethyl starch solutions for cryopreservation of avian red blood cells. Am J Vet Res. 2015;76(6):487-93. CrossRef
Gurtovenko AA, Anwar J. Modulating the structure and properties of cell membranes: the molecular mechanism of action of dimethyl sulfoxide. J Phys Chem B. 2007;111(35):10453-60. CrossRef
Hinckley GT, Johnson CJ, Jacobson KH, et al. Persistence of pathogenic prion protein during simulated wastewater treatment processes. Environ Sci Technol. 2008;42(14):5254-9. CrossRef
Imaizumi K, Nishishita N, Muramatsu M, et al. A simple and highly effective method for slow-freezing human pluripotent stem cells using dimethyl sulfoxide, hydroxyethyl starch and ethylene glycol. PLoS One [Internet]. 2014 Feb 12 [cited 2020 March 13];9(2):e88696. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0088696 CrossRef
Kemmann E. Creutzfeldt-Jakob disease (CJD) and assisted reproductive technology (ART). Quantification of risks as part of informed consent. Hum Reprod. 1998;13(7):1777. CrossRef
Kenmochi T, Asano T, Maruyama M, et al. Cryopreservation of human pancreatic islets from non-heart-beating donors using hydroxyethyl starch and dimethyl sulfoxide as cryoprotectants. Cell Transplant. 2008;17(1-2):61-7. CrossRef
Keros V, Hultenby K, Borgström B, et al. Methods of cryopreservation of testicular tissue with viable spermatogonia in pre-pubertal boys undergoing gonadotoxic cancer treatment. Hum Reprod. 2007;22(5):1384-95. CrossRef
Kim H, Tanaka S, Une S, et al. A comparative study of the effects of glycerol and hydroxyethyl starch in canine red blood cell cryopreservation. J Vet Med Sci. 2004;66(12):1543-7. CrossRef
Kirpatovskii VI, Efremov GD, Frolova EV, Kudryavtseva LV. Stimulation of spermatogenesis and synthesis of testosterone by allotransplantation of neonatal testicular tissue under tunica albuginea of cryptorchid testis. Bull Exp Biol Med. 2019;166(4):497-502. CrossRef
Klinefelter GR, Hall PF, Ewing LL. Effect of luteinizing hormone deprivation in situ on steroidogenesis of rat Leydig cells purified by a multistep procedure. Biol Reprod. 1987;36(3):769-83. CrossRef
Körber C, Scheiwe MW. The cryoprotective properties of hydroxyethyl starch investigated by means of differential thermal analysis. Cryobiology. 1980;17(1):54-65. CrossRef
Leung PC, Gronow MJ, Kellow GN, et al. Serum supplement in human in vitro fertilization and embryo development. Fertil Steril. 1984;41(1):36-9. CrossRef
Lionetti FJ, Hunt SM, Mattaliano RJ, Valeri CR. In vitro studies of cryopreserved baboon granulocytes. Transfusion. 1978;18(6):685-92. CrossRef
Lionetti FJ, Hunt SM. Cryopreservation of human red cells in liquid nitrogen with hydroxyethyl starch. Cryobiology. 1975;12(2):110-8. CrossRef
Liu Y, Xu X, Ma X, et al. Cryopreservation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells with reduced dimethylsulfoxide and well-defined freezing solutions. Biotechnol Prog. 2010;26(6):1635-43. CrossRef
Liu Y, Xu X, Ma XH, et al. Effect of various freezing solutions on cryopreservation of mesenchymal stem cells from different animal species. Cryo Letters. 2011;32(5):425-35. PubMed
McGann LE. Differing actions of penetrating and nonpenetrating cryoprotective agents. Cryobiology. 1978;15(4):382-90. CrossRef
Persidsky M, Ellett M. Hydroxyethyl starch as a cryopreservative for nucleated mammalian-cells. Cryobiology. 1971;8(6):586-7. CrossRef
Petrenko Y. Cryopreservation of human embryonic liver cells using DMSO and high molecular weight polymers. Problems of Cryobiology. 2003; (3):80-7. Full Text
Sánchez-Salinas A, Cabañas-Perianes V, Blanquer M, et al. An automatic wash method for dimethyl sulfoxide removal in autologous hematopoietic stem cell transplantation decreases the adverse effects related to infusion. Transfusion. 2012;52(11):2382-6. CrossRef
Scheinkönig C, Kappicht S, Kolb HJ, Schleuning M. Adoption of long-term cultures to evaluate the cryoprotective potential of trehalose for freezing hematopoietic stem cells. Bone Marrow Transplant. 2004;34(6):531-6. CrossRef
Snyman E, Van der Merwe JV. Endotoxin-polluted medium in a human in vitro fertilization program. Fertil Steril. 1986;46(2):273-6. CrossRef
Stolzing A, Naaldijk Y, Fedorova V, Sethe S. Hydroxyethylstarch in cryopreservation - mechanisms, benefits and problems. Transfus Apher Sci. 2012;46(2):137-47. CrossRef
Tai J, Tze WJ, Johnson HW. Cryopreservation of rat Leydig cells for in-vitro and in-vivo studies. Hormone and Metabolic Research. 1994;26(3):145-7. CrossRef
Takahashi T, Hirsh A, Erbe E, Williams RJ. Mechanism of cryoprotection by extracellular polymeric solutes. Biophys J. 1988;54(3):509-18. CrossRef
Thomas MJ, Parry ES, Nash SG, Bell SH. A method for the cryopreservation of red blood cells using hydroxyethyl starch as a cryoprotectant. Transfus Sci. 1996;17(3):385-96. CrossRef
Truyen U, Parrish CR, Harder TC, Kaaden OR. There is nothing permanent except change. The emergence of new virus diseases. Vet Microbiol. 1995;43(2-3):103-22. CrossRef
van Os HC, Drogendijk AC, Fetter WP, et al. The influence of contamination of culture medium with hepatitis B virus on the outcome of in vitro fertilization pregnancies. Am J Obstet Gynecol. 1991;165(1):152-9. CrossRef
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
