Антиоксидант тролокс як фактор стабілізації ядровмісних клітин кордової крові людини при кріоконсервуванні

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo33.02.122

Ключові слова:

ядровмісні клітини кордової крові, кріоконсервування, диметилсульфоксид, тролокс, стадії апоптозу

Анотація

У роботі представлено експериментальні дані з визначення збереженості та стадій апоптозу/некрозу ядровмісних клітин кордової крові людини з метою встановлення кількості живих функціонально активних клітин після кріоконсервування в розчинах із різною концентрацією ДМСО та водорозчинного аналога вітаміну Е — антиоксиданта тролоксу. Підрахунок кількості ядровмісних клітин кордової крові людини після заморожування в середовищах із додаванням тролоксу показав максимальну їхню збереженість у пробах з 7,5% ДМСО та 50, 70 або 200 мкМ антиоксиданта. Методом протокової цитофлуориметрії з додаванням реагенту Annexin V FITC, який специфічно зв’язується з фосфоліпідами, та ДНК барвника 7-аміно-актиноміцину D (7-AAD) встановлено, що тролокс у концентраціях 50–70 мкМ забезпечує збільшення кількості живих клітин з неушкодженою мембраною (AnnexinV─/7AAD─) на 12–16% у порівнянні з контролем — використання в кріопротекторному розчині тільки ДМСО. Отримані результати вказують на ефективність застосування антиоксиданта тролоксу та перспективність розробки тролоксвмісних кріопротекторних сумішей для заморожування та довгострокового зберігання ядровмісних, у тому числі гемопоетичних прогеніторних, клітин кордової крові.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2023; 33(2):122-132

Біографії авторів

Pavlo Zubov , Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Oksana Zubova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Lyubov Babijchuk, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоцитології

Посилання

Babijchuk LO, Gryschenko VI, Gurina TM, etc., inventors; Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of NAS of Ukraine, assignee. [The technique of cryopreservation for cord blood nucleated cells, including hematopoietic stem cells]. Ukraine patent № 92227. 2010 Oct 11. Ukrainian.

Baishya SK, Biswas RK, Govindasamy K, et al. Effect of reduced glutathione, water soluble vitamin E analogue and butylated hydroxytoluene on the post thaw characteristics of boar spermatozoa. CryoLetters. 2018; 39(4): 227-34. PubMed

Ballen KK, Gluckman E, Broxmeyer HE. Umbilical cord blood transplantation: the first 25 years and beyond. Blood. 2013; 122(4): 491-8. CrossRef

Davis JM, editor. Basic cell culture. A practical approach. Oxford: Oxford University Press; 2002. 382p.

Donaldson C, Armitage WJ, Denning-Kendall PA, et al. Optimal cryopreservation of human umbilical cord blood. Bone Marrow Transplant. 1996; 18(4): 725-73. PubMed

Giordano ME, Caricato R, Lionetto MG. Concentration dependence of the antioxidant and prooxidant activity of Trolox in HeLa cells: involvement in the induction of apoptotic volume decrease. Antioxidants [Internet]. 2020 Oct 29 [cited 2022 Sept 19]; 9(11): 1058. Available from: https://www.mdpi.com/2076-3921/9/11/1058 CrossRef

Ha SJ, Kim BG, Lee YA, et al. Effect of antioxidants and apoptosis inhibitors on cryopreservation of murine germ cells enriched for spermatogonial stem cells. PLoS One [Internet]. 2016 Aug 22 [cited 2022 Sept 12]; 11(8): e0161372. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0161372 CrossRef

Kekre N, Antin JH. Hematopoietic stem cell transplantation donor sources in the 21st century: choosing the ideal donor when a perfect match does not exist. Blood. 2014; 124(3): 334-43. CrossRef

Massey KD, Burton KP. Free radical damage in neonatal rat cardiac myocyte cultures: effects of alpha-tocopherol, Trolox and phytol. Free Radic Biol Med. 1990; 8(5): 449-58. CrossRef

Minaei M, Barbarestani M, Nekoonam S, et al. Effect of Trolox addition to cryopreservation media on human sperm motility. Iran J Reprod Med. 2012; 10(2): 99-104. PubMed

Murugesan M, Nair CK, Nayanar SK, Pentapati KC. Flow cytometric enumeration of CD34+ hematopoietic stem cells: A comparison between single- versus dual-platform methodology using the ISHAGE protocol. Asian J Transfus Sci. 2019; 13(1): 43-6. CrossRef

Oram JF, Wolfbauer G, Vaughan AM, et al. Phospholipid transfer protein interacts with and stabilizes ATP-binding cassette transporter A1 and enhances cholesterol efflux from cells. J Biol Chem. 2003; 278(52): 52379-85. CrossRef

Ray PD, Huang BW, Tsuji Y. Reactive oxygen species homeostasis and redox regulation in cellular signaling. Cell Signal. 2012; 24(5): 981-90. CrossRef

Rocha V, Gluckman E. Eurocord-Netcord registry and European blood and marrow transplant group. Improving outcomes of cord blood transplantation: HLA matching, cell dose and other graft- and transplantation-related factors. Br J Haematology. 2009; 147(2): 262-74. CrossRef

Varo-Ghiuru F, Miclea I, Hettig A, et al. Lutein, trolox, ascorbic acid and combination of trolox with ascorbic acid can improve boar semen quality during cryopreservation. CryoLetters. 2015; 36(1): 1-7. PubMed

Vermes I, Haanen C, Steffens-Nakken H, Reutelingsperger C. A novel assay for apoptosis. Flow cytometric detection of phosphatidylserine expression on early apoptotic cells using fluorescein labelled annexin. J Immunol Methods. 1995; 184(1): 39-51. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2023-09-25

Як цитувати

Zubov , P., Zubova, O., & Babijchuk, L. (2023). Антиоксидант тролокс як фактор стабілізації ядровмісних клітин кордової крові людини при кріоконсервуванні. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 33(2), 122–132. https://doi.org/10.15407/cryo33.02.122

Номер

Розділ

Кріоконсервування біологічних систем