Клинический опыт использования криоконсервированных спермиев, полученных при биопсии у пациентов с азооспермией

Автор(и)

  • Viktoriya V. Podufaliy Відділ кріобіології системи репродукції, Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків 3-я Міська лікарня, м. Львів

Ключові слова:

сперматозоіди, кріоконсервування, допоміжні репродуктивні технології

Анотація

Розроблений раніше виÑокоефективний метод кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð½Ð¾Ñ€Ð¼Ð¾Ð·Ð¾Ð¾Ñпермічного еÑкулÑту було заÑтоÑовано Ð´Ð»Ñ Ð¿Ð¾Ð¾Ð´Ð¸Ð½Ð¾ÐºÐ¸Ñ… епідидімальних Ñперміїв з метою викориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ð² програмах допоміжних репродуктивних технологій (ДРТ). Клітини охолоджували в капілÑрах з розчином 20% Ñахарози Ñ– 15% гліцерину від 22 до –35°С зі швидкіÑÑ‚ÑŽ 1 град/хв, від –35 до –70°С зі швидкіÑÑ‚ÑŽ 20 град/хв, а потім мікрокапілÑри занурювали в рідкий азот. ПіÑÐ»Ñ Ð²Ñ–Ð´Ñ–Ð³Ñ€Ñ–Ð²Ñƒ виживаніÑÑ‚ÑŒ Ñперматозоїдів Ñклала 92%. Ооцити запліднювали мікроін’єкцією поодинокого ÑперміÑ, піÑÐ»Ñ ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ‚Ð° Ð¾Ñ†Ñ–ÑŽÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÑкоÑÑ‚Ñ– ембріон переноÑили до порожнини матки. ЧаÑтота наÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ð°Ð³Ñ–Ñ‚Ð½Ð¾Ñті  піÑÐ»Ñ Ð²Ð¸ÐºÐ¾Ñ€Ð¸ÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½Ñервованих Ñперміїв була вищою (53,1%), ніж ÑвіжоаÑпірованих клітин (46,1%). Таким чином, показано придатніÑÑ‚ÑŒ заÑтоÑованого методу кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð² ДРТ Ð´Ð»Ñ Ð¿Ð°Ñ†Ñ–Ñ”Ð½Ñ‚Ñ–Ð² з азооÑпермією.

Посилання

Treatment of female and male infertility. Assisted reproductive technologies. Ed. by Kulakov V.I., Leonov B.V., Kuzmichev L.N. Moscow: Med. Inform. Agenstvo, 2005.

Khilkevich L.V., Zdanovsky V.M., Togobetsky S., Gogolevsky P.A. Additional reproductive technologies (PESA and MESA) at infertility treatment stipulated by male factor. Problemy Reproduktsii. – 1998; 2: 29–33.

Yurchenko G.G., Dunaevskaya A.V., Kramar M.I. Effect of derivation method of motile fractions of gametes from human ejaculate on their morphofunctional integrity after cryopreservation. Problems of Cryobiology. – 2001; (2): 30–35.

Craft I., Bennet V., Nicholson N. Fertilising ability of testicular spermatozoa. Lancet.– 1993; 2 (342).– C. 864.

Craft I., Tsirigotis M. Simplified recovery, preparation and cryopreservation of testicular spermatozoa. J Hum Reprod 1995; 10 (7): 1623–1627.

Desai N., AbdelHafez F., Sabanegh E. Paternal effect on genomic activation, clinical pregnancy and live birth rate after ICSI with cryopreserved epididymal versus testicular spermatozoa. Reprod Biol Endocrinol 2009; 3 (7): 142–149.

Devroey P., Liu J., Nagy Z. et al. Normal fertilization of human oocytes after testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection (TESE and ICSI). Fertil Steril 1994; 62 (3): 639–641.

Devroey P., Nagy Z., Tournaye H. et al. Outcome of itracytoplasmic sperm injection with testicular spermatozoa in obstructive and non-obstructive azoospermia. J Hum Reprod 1996; 11 (5): 1015–1018.

Gardner D., Lane. M., Stevens J. Schoolcraft W. Noninvasive assessment of human embryo nutrient consumption as a measure of developmental potential. Fertil Steril 2001; 76 (6): 1175–1180.

Hovatta O., Moilanen J., von Smitten K. et al. Testicular needle biopsy, open biopsy, epididymal aspiration and intracytoplasmic sperm injection in obstructive azoospermia. J Hum Reprod 1995; 10 (10): 2595–2599.

Jacques I., Phillips S., Hemmingset R. et al. Ongoing pregnancy after ICSI of frozen-thawed PESA-retrieved spermatozoa and IVF in a controlled natural cycle. Reprod BioMed Online 2005; 10 (5): 650–652.

Janzen N. Use of electively cryopreserved microsurgically aspirated epididymal sperm with IVF and intracytoplasmic sperm injection for obstructive azoospermia. Fertil Steril 2000; 74 (4): 696–701.

Jin L., Jiang L.Y., Zhu G.J. et al.Comparison between the results of ICSI with fresh and with frozen-thawed sperm obtained by PESA to treat azoospermia. Zhonghua Nan Ke Xue 2006; 12 (5): 443–449.

Kalsi J., Thum MY., Muneer A. Analysis of the outcome of intracytoplasmic sperm injection using fresh or frozen sperm. Br J Urol 2011; 107 (7): 1124–1128.

Munne S., Alikani M., Tomkin G. et al. Embryo quality and chromosome abnormalities after ICSI. Abstract from the IXth World Congress on IVF and Alternate Assisted Reproduction. J Assist Reprod Genet 1995; 76 (12): 76.

Ou L., Guo YH., Sun YP. et al. Outcomes of ICSI with micro-amount frozen-thawed sperm obtained by PESA or TESA in the treatment of azoospermia. Zhonghua Nan Ke Xue 2010; 16 (4): 328–332.

Patrizio P. Cryopreservation of epididymal sperm. Mol Cell Endocrinol 2000; 169 (1–2): 11–14.

Schoysman R., Vanderzwalmen P., Nus M. Pregnancy after fertilization with human testicular spermatozoa. Lancet 1993; 13 (342): 1237.

Silber S., Nagy Z., Liu J. et al. The use of epididymal and testicular spermatozoa for intracytoplasmic sperm injection: the genetic implications for male infertility. J Hum Reprod 1995; 10 (8): 2031–2043.

Silber S., Van Steirteghem A.C., Liu J. et al. High fertilization and pregnancy rates after sperm obtained from testicle biopsy. J Hum Reprod 1995; 10 (1): 148–152.

Tournaye H., Merdad T., Silber S. et al. No differences in out-come after intracytoplasmic sperm injection with fresh or with frozen-thawed epididymal spermatozoa. J Hum Reprod 1999; 14 (1): 90–95.

Westlander G., Hamberger L., Hanson Ch. et al. Diagnostic epididymal and testicular sperm recovery and genetic aspects in azoospermic men. J Hum Reprod 1999; 14 (1): 118–122.

World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction. Cambridge, UK, 1999.

Опубліковано

2013-09-30

Як цитувати

Podufaliy, V. V. (2013). Клинический опыт использования криоконсервированных спермиев, полученных при биопсии у пациентов с азооспермией. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 23(3), 260–266. вилучено із https://journal.cryo.org.ua/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/302

Номер

Розділ

Кріомедицина, клінічна та експериментальна трансплантологія