Преципітація білків із холодоадаптованих личинок Tenebrio molitor у присутності ПЕГ-6000

Автор(и)

  • Aleksandr K. Gulevsky Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Elena O. Grischenkova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Liana I. Relina Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Diana V. Tretyak Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo25.04.350

Ключові слова:

холодова аклімація, білки, поліетиленгліколь, преципітація, електрофорез

Анотація

У порівнÑльному аÑпекті доÑліджено Ñпектри преципітованих ПЕГ-6000 білків неаклімованих та аклімованих личинок Tenebrio molitor.  Показано, що ÑкіÑний Ñклад кріопреципітованих білків аклімованих Ñ– неаклімованих личинок T. molitor має відмінноÑÑ‚Ñ–. Зокрема, у білкових Ñпектрах фільтратів із аклімованих личинок з'ÑвлÑлиÑÑ Ð±Ñ–Ð»ÐºÐ¸ з м. м. 11 кДа, Ñкі відÑутні у неаклімованих комах. Під Ñ‡Ð°Ñ Ð¿Ñ€ÐµÑ†Ð¸Ð¿Ñ–Ñ‚Ð°Ñ†Ñ–Ñ— білків із гомогенатів холодоаклімованих Ñ– неаклімованих личинок ÑпоÑтерігалаÑÑ Ð·Ð½Ð°Ñ‡ÑƒÑ‰Ð° Ñ€Ñ–Ð·Ð½Ð¸Ñ†Ñ Ð² кількоÑÑ‚Ñ– преципітату при концентраціÑÑ… поліетиленгліколю 12% Ñ– більше. Білки із фільтратів аклімованих личинок у приÑутноÑÑ‚Ñ– 6%-го розчину ПЕГ-6000 оÑаджувалиÑÑ Ð½Ð° 44 Ñ– 56% більше, ніж білків із неаклімованих оÑобин при 22 Ñ– 4°С відповідно. Ð—Ð±Ñ–Ð»ÑŒÑˆÐµÐ½Ð½Ñ ÐºÐ¾Ð½Ñ†ÐµÐ½Ñ‚Ñ€Ð°Ñ†Ñ–Ñ— ПЕГ-6000 з 4 до 6% призводило до поÑви в преципітатах із аклімованих личинок білків у діапазоні м. м. 30–42,5 кДа, Ñкі відÑутні у неаклімованих комах.

Біографії авторів

Aleksandr K. Gulevsky, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії холодової адаптації

Elena O. Grischenkova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії холодової адаптації

Liana I. Relina, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії холодової адаптації

Diana V. Tretyak, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ біохімії холодової адаптації

Посилання

Aghajari N., Feller G., Gerday C. et al. Structures of the psychrophilic Alteromonas haloplanctis a-amylase give insights into cold adaptation at a molecular level. Structure 1998; 6 (12): 1503–1516. CrossRef

Alvarez M., Zeelen J.P., Mainfroid V. et al. Triose-phosphate isomerase (TIM) of the psychrophilic bacterium Vibrio marinus. Kinetic and structural properties. J Biol Chem 1998; 273 (4): 2199–2206. CrossRef PubMed

Arnоrsdоttir J., Smaradоttir R.B., Magnusson O. et al. Characterization of a cloned subtilisin-like serine proteinase from a psychrotrophic Vibrio species. Eur J Biochem 2002; 269 (22): 5536–5546. CrossRef

Ciardiello M.A., Camardella L., Carratore V. et al. L-glutamate dehydrogenase from the antarctic fish Chaenocephalus aceratus. Primary structure, function and thermodynamic characterisation: relationship with cold adaptation. Biochim Biophys Acta 2000; 1543 (1): 11–23. CrossRef

Bhat R., Timasheff S.N. Steric exclusion is the principal source of the preferential hydration of proteins in the presence of polyethylene glycols. Protein Science 1992; 1: 1133–1143. CrossRef PubMed

Fields P.A., Houseman D.E. Decreases in аctivation еnergy and substrate affinity in cold-adapted A4-lactate dehydrogenase: evidence from the Antarctic notothenioid fish Chaeno-cephalus aceratus. Mol Biol Evol 2004; 21 (12): 2246–2255. CrossRef PubMed

Gulevsky A.K., Ryazantsev V.V., Grischenkova Ye.A., Relina L.I. Changes in protein composition of mealworms (Tenebrio molitor) during cold acclimation. Problems of Cryobiology 1995; (4): 29–32.

Korolevskaya L.B., Shmagel K.V. Spectroturbidimetric deter-mination of serum aggregates formed in polyethylene glycol. Immunologiya 2010; 31 (2): 108–111.

Liou Y.C., Daley M.E., Graham L.A. et al. Folding and structural characterization of highly disulfide-bonded beetle antifreeze protein produced in bacteria. Protein Expr Purif 2000; 19 (1): 148–157. CrossRef PubMed

Marshall C.B., Daley M.E., Graham L.A. et al. Identification of the ice-binding face of antifreeze protein from Tenebrio molitor. FEBS Lett 2002; 529 (2–3): 261–267. CrossRef

Osterman L.A. Methods of investigating proteins and nucleic acids: Electrophoresis and ultracentrifugation. Moscow, Nauka; 1981.

Paithankar K. R., Prasad K. S. Precipitation of DNA by polyethylene glycol and ethanol. Nucleic Acids Res 1991; 19 (6): 1346.

CrossRef

Peng J., Xia Z., Chen L. et al. Rapid and efficient isolation of high-quality small RNAs from recalcitrant plant species rich in polyphenols and polysaccharides. PLoS ONE 2014; 9 (5): e95687. CrossRef PubMed

Rizzello Ð., Romano A., Kottrab G. et al. Protein cold adaptation strategy via a unique seven-amino acid domain in the icefish (Chionodraco hamatus) PEPT1 transporter. PNAS 2013; 110 (17): 7068–7073. CrossRef PubMed

Qin W., Walker V.K. Tenebrio molitor antifreeze protein gene identification and regulation. Gene 2006; 367: 142–149. CrossRef PubMed

Scopes R. Methods of protein purification. Moscow, Mir; 1985.

Shulgin I.L., Ruckenstein E. Preferential hydration and solubility of proteins in aqueous solutions of polyethylene glycol. Biophysical Chemistry 2006; 120: 188–198. CrossRef PubMed

Yakhontov V.V. Pests of agricultural plants and products of Central Asia and actions against them. Tashkent, Gosizdat UzSSR; 1953.

Zhangyong He., Ying Zhu., Hongchen Gu. A new method for the determination of critical polyethylene glycol concentration for selective precipitation of DNA fragments. Applied Micro-biology and Biotechnology 2013; 97 (20): 9175–9183. CrossRef PubMed

Опубліковано

2015-12-21

Як цитувати

Gulevsky, A. K., Grischenkova, E. O., Relina, L. I., & Tretyak, D. V. (2015). Преципітація білків із холодоадаптованих личинок Tenebrio molitor у присутності ПЕГ-6000. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 25(4), 350–358. https://doi.org/10.15407/cryo25.04.350

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія