Morphofunctional Characteristics of Freshly Isolated and Cryopreserved Human Ovarian Granulosa and Cumulus Cells

Авторы

  • Marina P. Petrushko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Vladimir I. Pinyaev Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Elena B. Revenko Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Natalia A. Volkova Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
  • Natalia N. Chub Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo24.01.057

Ключевые слова:

гранулеза, кумулюс, культивирование, криоконсервирование

Аннотация

ИÑпользование комплекÑа клеток гранулезы и кумулюÑа (КГК) может быть перÑпективным при Ñокульти-вировании гамет и Ñмбрионов в программах вÑпомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), что делает актуальным их криоконÑервирование. Ð’ работе изучали КГК женщин возраÑтом 25–39 лет, проходивших ÐºÑƒÑ€Ñ Ð»ÐµÑ‡ÐµÐ½Ð¸Ñ Ð±ÐµÑÐ¿Ð»Ð¾Ð´Ð¸Ñ Ð¼ÐµÑ‚Ð¾Ð´Ð¾Ð¼ IVF. Ð”Ð»Ñ ÐºÑ€Ð¸Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²Ð¸Ñ€Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ ÑуÑпензии КГК иÑпользовали раÑтвор 1,5 Ðœ 1,2-пропандиола. Образцы охлаждали Ñо ÑкороÑтью 0,3 град/мин от 25 до –6°С, далее оÑущеÑтвлÑли инициацию криÑталлообразованиÑ, от –6 до –35°С ÑкороÑÑ‚ÑŒ Ð¾Ñ…Ð»Ð°Ð¶Ð´ÐµÐ½Ð¸Ñ ÑоÑтавлÑла 1 град/мин, поÑле Ñтого образцы погружали в жидкий азот и хранили при –196°С. ПоÑле отогрева КГК ÑохранÑли Ñвои оÑновные ÑвойÑтва: ÑпоÑобноÑÑ‚ÑŒ к адгезии и пролиферации, а также гормонопродуцирующую функцию. При культивировании выÑвлена задержка Ñ€Ð°Ð·Ð²Ð¸Ñ‚Ð¸Ñ ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚ÑƒÑ€Ñ‹ КГК на 1–2 Ñуток по Ñравнению Ñо Ñвежевыделенными клетками. Через 7 Ñуток поÑле ÑкÑплантации культуры деконÑервированных КГК практичеÑки не отличалиÑÑŒ от первичных культур ÑоответÑтвующего Ñрока Ñ€Ð°Ð·Ð²Ð¸Ñ‚Ð¸Ñ in vitro. ИзменилÑÑ ÑƒÑ€Ð¾Ð²ÐµÐ½ÑŒ гормонопродукции КГК поÑле криоконÑервированиÑ: ÑÑтрадиола – ÑнизилÑÑ Ð½Ð° 89,9%, а прогеÑтерона – повыÑилÑÑ Ð½Ð° 81,4% отноÑительно показателей Ñвежевыделенных ÑуÑпензий. Полученные результаты ÑвидетельÑтвуют о том, что КГК можно получать и хранить в уÑловиÑÑ… низкотемпе-ратурных банков Ñ Ñ†ÐµÐ»ÑŒÑŽ дальнейшего иÑÐ¿Ð¾Ð»ÑŒÐ·Ð¾Ð²Ð°Ð½Ð¸Ñ Ð² ВРТ.

Биографии авторов

Marina P. Petrushko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиологии ÑиÑтем репродукции

Vladimir I. Pinyaev, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиологии ÑиÑтем репродукции

Elena B. Revenko, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиологии ÑиÑтем репродукции

Natalia A. Volkova, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков

Отдел криобиохимии

Natalia N. Chub, Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov

Отдел криобиологии ÑиÑтем репродукции

Библиографические ссылки

Alisch A., Ruping K., Koster F. et al. Cumulus cell apoptosis as a predictor for oocyte quality in artificial reproduction technique. Zentralbl Gynakol 2003; 125(11): 452–457. PubMed

Castro S.V., de Carvalho A.A., da Silva C.M., et al. Freezing solution containing dimethylsulfoxide and fetal calf serum maintains survival and ultrastructure of goat preantral follicles after cryopreservation and in vitro culture of ovarian tissue. Cell Tissue Res 2011; 346(2): 283–292. CrossRef PubMed

Chub N.N., Lobyntseva G.S., Demina L.G. Effect of cryoprotectants on morphological and functional integrity of human ovarian tissue. In: Cryopreservation of cells and tissues. Kharkov; 1989: p. 118. PubMed

Isachenko V., Isachenko E., Mallmann P., Rahimi G. Increasing follicular and stromal cell proliferation in cryopreserved human ovarian tissue after long-term precooling prior to freezing: in vitro versus chorioallantoic membrane (CAM) xenotransplantation. Cell Transplant 2013; 22(11): 2053–2061. CrossRef PubMed

Freeman M., Whitworth C., Hill G. Granulosa cell co-culture enhances human embryo development and pregnancy rate following in vitro fertilization. Hum Reprod 1995; 10(2): 408–414. PubMed

Fuller B., Green C., Grischenko V.I. Cryopreservation for cell banking: current concepts at the turn of 21st century. Problems of Cryobiology 2003; (2): 62–83.

Grischenko V.I., Paraschuk Yu.S., Dakhno F.V., Yurchenko G.G. Cryobiology and infertility problems. Kiev: Naukova Dumka; 1990.

Gunasena K., Villines P., Critser J. Live births after autologous transplantation of cryopreserved mouse ovaries. Hum Reprod 1997; 12(1): 101–106. CrossRef PubMed

Gook D.A., Osborn S.M., Bourne H., Johnston W.I. Fertilization of human oocytes following cryopreservation; normal karyotypes and absence of stray chromosomes. Hum Reprod 1994; 9(4): 684–691. PubMed

Gook D.A., Osborn S.M., Johnston W.I. Cryopreservation of mouse and human oocytes using 1,2-propanediol and the configuration of the meiotic spindle. Hum Reprod 1993; 8(7): 1101–1109. PubMed

Gook D.A., Osborn S.M., Johnston W.I. Parthenogenetic activation of human oocytes following cryopreservation using 1,2-propanediol. Hum Reprod 1995; 10(3): 654–658. PubMed

Gook D.A., Schiewe M.C., Osborn S.M. et al. Intracytoplasmic sperm injection and embryo development of human oocytes cryopreserved using 1,2-propanediol. Hum Reprod 1995; 10(10): 2637–2641. PubMed

Host E., Mikkelsen A.L., Lindenberg S., Smidt-Jensen S. Apoptosis in human cumulus cells in relation to maturation stage and cleavage of the corresponding oocyte. Acta Obstet Gynecol Scand 2000; 79(11): 936–940. PubMed

Johnson J., Higdon H., Boone W. Effect of human granulosa cell co-culture using standard culture media on the maturation and fertilization potential of immature human oocytes. Fertil Steril 2008; 90(5): 1674–1679. CrossRef PubMed

Lindley E., Jacobson J., Corselli J. Cryopreservation of human cumulus cells for co-cultures and assessment of DNA damage after thawing using the comet assay II. J Assist Reprod Genet 2001; 18(10): 534–538. CrossRef PubMed

Liu Y., Holyoak G., Wang S., Bunch T. The importance of cumulus cells on the in vitro production of bovine oocytes. Theriogenology 1995; 43(1): 267. CrossRef

Lebedeva I. Yu., Kibardina T.V., Kuzmina T.I. Participation of granulosa cells in mediating effect of prolactin and somatotropin on bovine oocyte-cumulus complexes in vitro. Tsytologiya 2005; 47(10): 882–888.

McNatty K.P., Baird D.T., Bolton A. et al. Concentration of estrogens and androgens in human ovarian venous plasma and follicular fluid throughout the menstrual cycle. J Endocrinol 1976; 71(2): 77–85. CrossRef PubMed

Muiheron G., Bossert N., Lapp J. et al. Human granulose-luteal and cumulus cells ezpress transforming growth factors-beta type 1 and type 2 mRNA. J Clin Endocrinol Metab 1992; 74(2): 32–40.

Parikh F., Nadkarni S., Naik N. еt al. Cumulus coculture and cumulus-aided embryo transfer increases pregnancy rates in patients undergoing in vitro fertilization. Fertil Steril 2006; 86(4): 839–847. CrossRef PubMed

Petrenko A.Y. Study of mitochondria membrane reparation after freeze-thawing. Kriobiologiya 1987; (2): 24–29.

Ruppert-Lingham C.J., Paynter S.J., Godfrey J. et al. Developmental potential of murine germinal vesicle stage cumulus-oocyte complexes following exposure to dimethylsulphoxide or cryo-preservation: loss of membrane integrity of cumulus cells after thawing. Hum Reprod 2003; 18(2): 392–398. CrossRef PubMed

Zhang A., Xu B., Sun Y. et al. The effect of human cumulus cells on the maturation and developmental potential of immature oocytes in ICSI cycles. J Assist Reprod Genet 2012; 29(4): 313–319. CrossRef PubMed

Загрузки

Опубликован

2014-03-25

Как цитировать

Petrushko, M. P., Pinyaev, V. I., Revenko, E. B., Volkova, N. A., & Chub, N. N. (2014). Morphofunctional Characteristics of Freshly Isolated and Cryopreserved Human Ovarian Granulosa and Cumulus Cells. Проблемы криобиологии и криомедицины, 24(1), 57–66. https://doi.org/10.15407/cryo24.01.057

Выпуск

Том 24 № 1 (2014): Проблемы криобиологии и криомедицины

Раздел

Теоретическая и экспериментальная криобиология

Лицензия

Copyright (c) 2020 Marina P. Petrushko, Vladimir I. Pinyaev, Elena B. Revenko, Natalia A. Volkova, Natalia N. Chub

Лицензия Creative Commons

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.

Авторы, публикующие в данном журнале, соглашаются со следующим:

  • Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution License, которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся не-эксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге), со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
  • Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).