Морфофункціональні характериÑтики Ñвіжовиділених Ñ– кріоконÑервованих клітин гранульози та кумулюÑа Ñєчників людини
DOI:
https://doi.org/10.15407/cryo24.01.057Ключові слова:
гранульоза, кумулюÑ, культивуваннÑ, кріоконÑервуваннÑАнотація
ВикориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÐ¾Ð¼Ð¿Ð»ÐµÐºÑу клітин гранульози та кумулюÑа (КГК) може бути перÑпективним при Ñпівкультивуванні гамет та ембріонів у програмах допоміжних репродуктивних технологій (ДРТ), що робить нагальним Ñ—Ñ… кріоконÑервуваннÑ. Ð’ роботі вивчали КГК жінок віком 25–39 років, Ñкі проходили ÐºÑƒÑ€Ñ Ð»Ñ–ÐºÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð±ÐµÐ·Ð¿Ð»Ñ–Ð´Ð´Ñ Ð¼ÐµÑ‚Ð¾Ð´Ð¾Ð¼ IVF.Â Ð”Ð»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÑуÑпензії КГК викориÑтовували 1,5 Ðœ розчин 1,2-ПД. Зразки охолоджували зі швидкіÑÑ‚ÑŽ 0,3 град/хв від 25 до –6°С, далі здійÑнювали ініціацію криÑталоутвореннÑ, від –6 до –35°С швидкіÑÑ‚ÑŒ Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ Ñкладала 1 град/хв; піÑÐ»Ñ Ñ†ÑŒÐ¾Ð³Ð¾Â Ð·Ñ€Ð°Ð·ÐºÐ¸ занурювали в рідкий азот Ñ– зберігали при –196°С. ПіÑÐ»Ñ Ð²Ñ–Ð´Ñ–Ð³Ñ€Ñ–Ð²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐšÐ“Ðš зберігали Ñвої оÑновні влаÑтивоÑÑ‚Ñ–: здатніÑÑ‚ÑŒ до адгезії та проліферації, а також гормонопродукуючу функцію. При культивуванні виÑвлено затримку розвитку культури КГК на 1–2 доби в порівнÑнні зі Ñвіжовиділеними клітинами. Через 7 діб піÑÐ»Ñ ÐµÐºÑплантації культури деконÑервованих КГК практично не відрізнÑлиÑÑŒ від первинних культур КГК відповідного терміну розвитку in vitrо. ЗмінивÑÑ Ñ€Ñ–Ð²ÐµÐ½ÑŒ гормонопродукції КГК піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑервуваннÑ: еÑтрадіолу – знизивÑÑ Ð½Ð° 89,9%, а прогеÑтерону – підвищивÑÑ Ð½Ð° 81,4% відноÑно показників Ñвіжовиділених ÑуÑпензій. Отримані результати Ñвідчать про те, що КГК можна отримувати Ñ– зберігати в умовах низькотемпературних банків з метою подальшого викориÑÑ‚Ð°Ð½Ð½Ñ Ñƒ ДРТ.
Посилання
Alisch A., Ruping K., Koster F. et al. Cumulus cell apoptosis as a predictor for oocyte quality in artificial reproduction technique. Zentralbl Gynakol 2003; 125(11): 452–457. PubMed
Castro S.V., de Carvalho A.A., da Silva C.M., et al. Freezing solution containing dimethylsulfoxide and fetal calf serum maintains survival and ultrastructure of goat preantral follicles after cryopreservation and in vitro culture of ovarian tissue. Cell Tissue Res 2011; 346(2): 283–292. CrossRef PubMed
Chub N.N., Lobyntseva G.S., Demina L.G. Effect of cryoprotectants on morphological and functional integrity of human ovarian tissue. In: Cryopreservation of cells and tissues. Kharkov; 1989: p. 118. PubMed
Isachenko V., Isachenko E., Mallmann P., Rahimi G. Increasing follicular and stromal cell proliferation in cryopreserved human ovarian tissue after long-term precooling prior to freezing: in vitro versus chorioallantoic membrane (CAM) xenotransplantation. Cell Transplant 2013; 22(11): 2053–2061. CrossRef PubMed
Freeman M., Whitworth C., Hill G. Granulosa cell co-culture enhances human embryo development and pregnancy rate following in vitro fertilization. Hum Reprod 1995; 10(2): 408–414. PubMed
Fuller B., Green C., Grischenko V.I. Cryopreservation for cell banking: current concepts at the turn of 21st century. Problems of Cryobiology 2003; (2): 62–83.
Grischenko V.I., Paraschuk Yu.S., Dakhno F.V., Yurchenko G.G. Cryobiology and infertility problems. Kiev: Naukova Dumka; 1990.
Gunasena K., Villines P., Critser J. Live births after autologous transplantation of cryopreserved mouse ovaries. Hum Reprod 1997; 12(1): 101–106. CrossRef PubMed
Gook D.A., Osborn S.M., Bourne H., Johnston W.I. Fertilization of human oocytes following cryopreservation; normal karyotypes and absence of stray chromosomes. Hum Reprod 1994; 9(4): 684–691. PubMed
Gook D.A., Osborn S.M., Johnston W.I. Cryopreservation of mouse and human oocytes using 1,2-propanediol and the configuration of the meiotic spindle. Hum Reprod 1993; 8(7): 1101–1109. PubMed
Gook D.A., Osborn S.M., Johnston W.I. Parthenogenetic activation of human oocytes following cryopreservation using 1,2-propanediol. Hum Reprod 1995; 10(3): 654–658. PubMed
Gook D.A., Schiewe M.C., Osborn S.M. et al. Intracytoplasmic sperm injection and embryo development of human oocytes cryopreserved using 1,2-propanediol. Hum Reprod 1995; 10(10): 2637–2641. PubMed
Host E., Mikkelsen A.L., Lindenberg S., Smidt-Jensen S. Apoptosis in human cumulus cells in relation to maturation stage and cleavage of the corresponding oocyte. Acta Obstet Gynecol Scand 2000; 79(11): 936–940. PubMed
Johnson J., Higdon H., Boone W. Effect of human granulosa cell co-culture using standard culture media on the maturation and fertilization potential of immature human oocytes. Fertil Steril 2008; 90(5): 1674–1679. CrossRef PubMed
Lindley E., Jacobson J., Corselli J. Cryopreservation of human cumulus cells for co-cultures and assessment of DNA damage after thawing using the comet assay II. J Assist Reprod Genet 2001; 18(10): 534–538. CrossRef PubMed
Liu Y., Holyoak G., Wang S., Bunch T. The importance of cumulus cells on the in vitro production of bovine oocytes. Theriogenology 1995; 43(1): 267. CrossRef
Lebedeva I. Yu., Kibardina T.V., Kuzmina T.I. Participation of granulosa cells in mediating effect of prolactin and somatotropin on bovine oocyte-cumulus complexes in vitro. Tsytologiya 2005; 47(10): 882–888.
McNatty K.P., Baird D.T., Bolton A. et al. Concentration of estrogens and androgens in human ovarian venous plasma and follicular fluid throughout the menstrual cycle. J Endocrinol 1976; 71(2): 77–85. CrossRef PubMed
Muiheron G., Bossert N., Lapp J. et al. Human granulose-luteal and cumulus cells ezpress transforming growth factors-beta type 1 and type 2 mRNA. J Clin Endocrinol Metab 1992; 74(2): 32–40.
Parikh F., Nadkarni S., Naik N. еt al. Cumulus coculture and cumulus-aided embryo transfer increases pregnancy rates in patients undergoing in vitro fertilization. Fertil Steril 2006; 86(4): 839–847. CrossRef PubMed
Petrenko A.Y. Study of mitochondria membrane reparation after freeze-thawing. Kriobiologiya 1987; (2): 24–29.
Ruppert-Lingham C.J., Paynter S.J., Godfrey J. et al. Developmental potential of murine germinal vesicle stage cumulus-oocyte complexes following exposure to dimethylsulphoxide or cryo-preservation: loss of membrane integrity of cumulus cells after thawing. Hum Reprod 2003; 18(2): 392–398. CrossRef PubMed
Zhang A., Xu B., Sun Y. et al. The effect of human cumulus cells on the maturation and developmental potential of immature oocytes in ICSI cycles. J Assist Reprod Genet 2012; 29(4): 313–319. CrossRef PubMed
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2020 Marina P. Petrushko, Vladimir I. Pinyaev, Elena B. Revenko, Natalia A. Volkova, Natalia N. Chub
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
