Вплив кріоконсервування на експресію хромогранину A в культурі клітин наднирників неонатальних свиней

Автор(и)

  • Oksana Yu. Novikova Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Olga S. Sidorenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Galina A. Bozhok Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків
  • Tatyana P. Bondarenko Інститут проблем кріобіології Ñ– кріомедицини НАН України, м. Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/cryo29.04.344

Ключові слова:

культура клітин надниркових залоз, мультиклітинні сфероїди, хромогранін А, кріоконсервування, хромафінні клітини

Анотація

ДоÑліджено екÑпреÑÑ–ÑŽ хромограніну Ð (ХрÐ) в хромафінних клітинах наднирників новонароджених пороÑÑÑ‚ піÑÐ»Ñ ÐºÑ€Ñ–Ð¾ÐºÐ¾Ð½ÑервуваннÑ. Фрагменти тканини наднирників кріоконÑервували з викориÑтаннÑм 10% диметилÑульфокÑиду Ñ– контрольованої швидкоÑÑ‚Ñ– Ð¾Ñ…Ð¾Ð»Ð¾Ð´Ð¶ÐµÐ½Ð½Ñ 1 град/хв до –80°С з подальшим зануреннÑм в рідкий азот. У ÑкоÑÑ‚Ñ– інтактного контролю викориÑтовували незаморожені фрагменти. Ферментативним методом з фрагментів отримували ÑуÑпензію клітин, Ñку поміщали в умови культивуваннÑ. Культури клітин з інтактних Ñ– кріоконÑервованих фрагментів ÑвлÑли Ñобою моношар з прикріпленими на ньому мультиклітинними Ñфероїдами (МС). Методом цитофлуориметрії з викориÑтаннÑм антитіл до ХрРвÑта-новлено, що кількіÑÑ‚ÑŒ ХрÐ-позитивних клітин в кріоконÑервованих зразках значуще не відрізнÑєтьÑÑ Ð²Ñ–Ð´ контролю ((31,1 ± 2,7) Ñ– (32,9 ± 3,6)% відповідно). Імуноцитохімічним методом в обох культурах на початкову добу ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ð²Ð¸Ñвлені ХрÐ-позитивні клітини Ñк у Ñкладі моношару, так Ñ– в МС. ПротÑгом ÐºÑƒÐ»ÑŒÑ‚Ð¸Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ ÐºÑ–Ð»ÑŒÐºÑ–ÑÑ‚ÑŒ цих клітин значуще не відрізнÑлаÑÑ, однак вони перерозподілÑлиÑÑ: зменшувавÑÑ Ð²Ð¼Ñ–ÑÑ‚ у моношарі, але збільшувавÑÑ Ñƒ МС. Схожі кількіÑÑ‚ÑŒ клітин із екÑпреÑією ХрРта характер Ñ—Ñ… розподілу в обох культурах Ñвідчать про те, що кріоконÑÐµÑ€Ð²ÑƒÐ²Ð°Ð½Ð½Ñ Ñ„Ñ€Ð°Ð³Ð¼ÐµÐ½Ñ‚Ñ–Ð² наднирників у викориÑтаному режимі зберігає оÑновні Ñтруктурно-функціональні влаÑтивоÑÑ‚Ñ– хромафінних клітин.

 

Probl Cryobiol Cryomed 2019; 29(4): XXX–XXX

Біографії авторів

Oksana Yu. Novikova, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Olga S. Sidorenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Galina A. Bozhok, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Tatyana P. Bondarenko, Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, м. Харків

Відділ кріоендокринології

Посилання

Bondarenko TP, Legach EI, Kiroshka VV, et al. [Cultivation, cryopreservation and tissue transplantation of endocrine glands]. In: Goltsev AN, editor. [Actual problems of cryobiology and cryomedicine]. Kharkiv: IPCC; 2012. p. 361-401. Russian.

Bozhok GA, Sidorenko OS, Plaksina EM, et al. Neural differentiation potential of sympathoadrenal progenitors derived from fresh and cryopreserved neonatal porcine adrenal glands. Cryobiology. 2016; 73(2): 152-61. CrossRef

Chung KF, Sicard F, Vukicevic V, et al. Isolation of neural crest derived chromaffin progenitors from adult adrenal medulla. Stem Cells. 2009; 27(10): 2602-13. CrossRef

Elias S, Delestre C, Ory S, et al. Chromogranin A induces the biogenesis of granules with calcium- and actin-dependent dynamics and exocytosis in constitutively secreting cells. Endocrinology. 2012; 153(9): 4444-56. CrossRef

Fuller B, Lane N, Benson E, editors. Life in the frozen state. New York: CRC Press; 2004. 663 p. CrossRef

Gkolfinopoulos S, Tsapakidis K, Papadimitriou K, et al. Chromogranin A as a valid marker in oncology: clinical application or false hopes. World J Methodol. 2017; 7(1):9-15. CrossRef

Huber K. The sympathoadrenal cell lineage: specification, diversification, and new perspectives. Dev Biol. 2006; 298(2): 335-43. CrossRef

Kent C, Coupland RE. Localisation of chromogranin A and B, met-enkephalin-arg6-gly7-leu8 and PGP9.5-like immunoreactivity in the developing and adult rat adrenal medulla and extra-adrenal chromaffin tissue. J Anat. 1989;16(6): 213-25. PubMed

Livett BG, Borges R. Advances in cell culture for chromaffin cells and related cell types. In: Borges R, Gandia L, editors. Cell biology of the chromaffin cell. La Laguna, Madrid: Instituto Teófilo Hernando; 2004. p. 261-7.

Marotta V, Zatelli MC, Sciammarella C, et al. Chromogranin A as circulating marker for diagnosis and management of neuroendocrine neoplasms: more flaws than fame. Endocr Relat Cancer. 2018; 25(1): R11-R29. CrossRef

Plaksina EM, Sidorenko OS, Bozhok GA. Cryopreservation of multicellular spheroids derived from newborn piglet adrenal glands. Probl Cryobiol Cryomed. 2017; 27: 322-33. CrossRef

Plaksina EM, Sidorenko OS, Legach YeI, et al. [Expression of β-III-tubulin in neonatal adrenal cell culture: comparison of monolayer and 3D cultivation]. The Journal of V.N. Karazin Kharkiv National University. Series "Biology". 2017; 28: 76-86. Russian. CrossRef

Santana MM, Chung KF, Vukicevic V, et al. Isolation, characterization and differentiation of progenitor cells from human adult adrenal medulla. Stem Cells Transl. Med. 2012; 1(11): 783-91. CrossRef

Saxena S, Wahl J, Huber-Lang MS, et al. Generation of murine sympathoadrenergic progenitor-like cells from embryonic stem cells and postnatal adrenal glands. PLoS ONE [Internet]. 2013 May [cited10.10.2019]; 8(5): e64454. Available from: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0064454 CrossRef

Sidorenko OS, Bozhok GA, Bilavskaya SB, et al. [Morphological and functional characteristics of the culture of adrenal gland cells of newborn piglets.] Biotechnology 2012; 5 (5): 72-81. Russian.

Sidorenko OS, Bozhok GA, Legach EI, et al. [Obtaining primary culture of adrenal cells of newborn piglets]. Medytsyna Sogodni i Zavtra. 2011; 1(2): 248-52. Russian.

Sidorenko OS, Bozhok GA, Legach EI, et al. The study of the possibility of obtaining and cryopreservation of the primary culture of adrenal cells of newborn piglets. Problems of Cryobiology. 2011; 21(1): 58- 67.

Unsicker K, Müller TH. Purification of bovine adrenal chromaffin cells by differential plating. J Neurosci Methods. 1981; 4(3): 227-41. CrossRef

Xu ZQ, Lew JY, Harada K, et al. Immunohistochemical studies on phosphorylation of tyrosine hydroxylase in central catecholamine neurons using site-and phosphorylation state-specific antibodies. Neuroscience. 1998; 82(3): 72-38. CrossRef

Yoo SH, Huh YH, Hur YS. Inositol 1,4,5-trisphosphate receptor in chromaffin secretory granules and its relation to chromogranins. Cell Mol Neurobiol. 2010; 30:115-61. CrossRef

Downloads

Опубліковано

2019-12-17

Як цитувати

Novikova, O. Y., Sidorenko, O. S., Bozhok, G. A., & Bondarenko, T. P. (2019). Вплив кріоконсервування на експресію хромогранину A в культурі клітин наднирників неонатальних свиней. Проблеми кріобіології і кріомедицини, 29(4), 344–353. https://doi.org/10.15407/cryo29.04.344

Номер

Розділ

Теоретична та експериментальна кріобіологія